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주현 양
7 years ago
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1 Gene Cloning 메가MD 생물 김재윤 1

2 1) Gene cloning의 1단계 - 원하는 유전자를 얻어낸다 1 Internet에서의 유전자 검색 GenBank 2 GenBank 염기서열의 분석 3 Polymerase Chain Reaction(PCR)Reverse 4 Transcriptase-Polymerase Chain Reaction(RT-PCR)RNA의분리 5 PCR 산물의 전기영동(electrophoresis) 2) Gene cloning의 2단계 - 얻은 유전자를 vector에 삽입한다. 1 Vector에 대하여 DNA ligation과 restriction enzyme 2 T-vector를 이용한 PCR product의 cloning 3) Gene cloning의 3단계 -유전자가 삽입된 DNA를 세포 내로 주입한다. 1 Transformation 2 항생제와 LacZ를 이용한 selection 4) Gene cloning의 4단계 - 올바른 clone을 선택한다 1 Plasmid DNA 분리 2 Restriction enzyme mapping 3 DNA sequencing 2

3 >>Gene cloning의 1단계 - 원하는 유전자를 얻어낸다. 1. 어떤 유전자에서 찾을 것인가? 유전자는 RNA에서 얻을 수도 있고 DNA에서 얻을 수도 있다. DNA 에서는 exon 과 intron, cds(coding sequences)를 생각해야 한다. 우선 어떤 종(species)에서 실험해야 하는가를 결정해야 한다. Human, rat, mouse 등 각각의 종에 해당이 되어야 한다. 그다음으로중요한것은특히mRNA를 이용하는 경우에 반드시 어떤 장기를 사용해야 하는가를 명백히 해야 한다는 것이다. 각 장기들에서 DNA는대개같다고볼수있지만 mrna는있을수도 있고 없을 수도 있다. 그리고 구조가 다를 수도 있습니다. 따라서 자신이 얻고자 하는 유전자가 잘 발현되는 장기를 선택해야 한다. 2. 유전자를 어떻게 얻을 것인가? Library screening 과 PCR(polymerase chain reaction) 방법. 3. 유전자에서 증폭할 부분이 어디인가? 3

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5 >>Internet에서의 유전자 검색 -GenBank 5

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9 <Genomic DNA, mrna, CDS와의 관계> 사람의 유전자는 exon과 intron으로 구성되어 있다. 첫 exon 앞에는 이 유전자의 발현을 조절해주는 promoter가 존재합니다. 9

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11 The Universal Genetic Code 11

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14 >>Polymerase Chain Reaction (PCR) PCR에는 다음과 같은 재료가 필요하다. 1.Template DNA : 증폭 대상이 되는 DNA. 2. 한쌍의primer : 증폭할 부분을 잡는 짧은 oligonucleotide 이다. 3. dntp(datp, dctp, dgtp, dttp) : 유전자를 합성하는 재료가 되는 nucleotide들이다. 4. Taq polymerase : 열에 특별히 강한 유전자 합성효소. 14

15 1. DNA 의변성(denaturation) 90 C - 96 C로 가열하여 double strand DNA(ds DNA)를 single strand DNA(ssDNA)로 분리시킨다. 높은 온도일수록 ssdna 로 잘 이행되지만 Taq DNA polymerase도 온도가 아주 높은 상태에서는 활성이 낮아질 수 있으므로 보통 94 C로 합니다. 첫 cycle에서는 확실한 변성을 위하여 약 5분간 지속시킵니다. 2. Primer 의결합(annealing) 50 C - 65 C에서 진행됩니다. 염기간의 결합은 G와 C는 세군데에서 수소결합이 일어나고, A와 T는 두군데에서 결합이 일어나므로 G+C 비율에 따라 결합온도에 변화를 주는 것이 좋습니다. 사실 primer 를 만드는 것도 이 annealing temperature를 고려하여 합성해야 합니다. 일반적으로 GC content 가 50%가되는primer 쌍을 이용하는 것이 바람직합니다. 3. DNA의합성(polymerization) 70 C - 74 C에서 시행하며 원하는 PCR 산물의 크기가 크거나 반응요소의 농도가 낮을 때에는 시간을 연장시킬 수도 있습니다. Taq DNA polymerase는보통1분에 2,000-4,000 nucleotides를 합성할 수 있으므로 원하는 PCR 산물의 크기 1 kb마다 1분 정도의 시간을 배당하면 충분히 반응이 일어납니다. 마지막 cycle 에는 약 10분정도시간을충분히주는것이좋겠습니다. 15

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17 다음은 대표적인 PCR mixture의 예입니다. example of PCR mix DNA template 1 ul Primer, upstream(10 pmoles/ul) 1 ul Primer, downstream(10 pmoles/ul) 1 ul 2.5 mm dntp 4 ul 10x Taq buffer (+MgCl 2 ) 5 ul Taq DNA polymerase(1 u/ul) 1 ul water to 50 ul example of PCR cycle 94 C 5분 94 C 30초 -60 C 30초 -72 C 30초 (30 cycle) 72 C 5분 17

18 Primer의디자인 1) 관심있는 부분이 포함되어야 한다 주로 ORF 대개 단백질의 expression을 위해서는 ORF 전체가 필요하게 됩니다. 2) 증폭하려는 부위의 크기를 고려해야 한다 bp 3) GC content와 primer length 4) 이상한 염기서열은 피하라 예, primer가 GGGGCCCCGGTTTTAATTAA경우. 5) 합성될 때의 사정을 고려하라 이것도 조금 어려운 내용이지만, primer에 포함되지는 않았어도 증폭되는 부위에 너무 GC content가 높다거나 다른 secondary structure를 형성할 수 있는 부위가 있으면 잘 안될 것입니다 18

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22 RT-PCR의반응 cdna 를 만드는 반응의 예 Total RNA 1-5 ug Random hexamer or nonamer (100 ng/ul) 1 ul 10x reverse transcriptase buffer 2 ul 10 mm DTT 4 ul 10 mm dntp 1 ul Reverse transcriptase (250 units/ul) 1 ul (Mn 2+ 에서는 역전사 효소 기능이 유지되며 Mn 2+ 를 chelate시키고 MgCl 2+ 를 처리하면 DNA Polymerase 활성을 모두 가진다. water to 20 ul 70 C 10분 RNA denaturation 42 C 1시간 Reverse transcriptase reaction 80 C 15분 Enzyme killing 22

23 >>RNA의분리 1) RNase로부터 RNA를 보호한다 주위 환경의 RNase contamination 방지하기 위해서 시약에 DEPC라는 RNase inhibitor를처리. 용기는 대개 1회용을 쓰고, 어쩔수없는경우autoclave, baking 등을 이용한다. 2) 단백질을 제거한다 Phenol/Chloroform을 처리하거나 ultracentrifuge 등여러방법. 3) DNA로부터 선택적으로 RNA를 분리한다. 23

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28 Spectrophotometry 28

29 >>PCR 산물의 전기영동 (electrophoresis). 29

30 Commonly used electrophoresis buffers Buffer Concentrated stock solution (per liter) Tris-acetate (TAE) 50x 242 g Tris base 57.1 ml glacial acetic acid 100 ml 0.5 M EDTA (ph 8.0) Generally used for agarose EP Tris-borate (TBE) 20x g Tris base 61.7 g boric acid 7.44 g Na2EDTA-2H2O Generally used for DNA sequencing 30

31 Gel loading buffers (6x) I 0.25% bromophenol blue 0.25% xylene cyanol FF 40%(w/v) sucrose in water II 0.25% bromophenol blue 0.25% xylene cyanol FF 15% Ficoll(Type 400) in water III 0.25% bromophenol blue 0.25% xylene cyanol FF 30% glycerol in water IV 0.25% bromophenol blue 40%(w/v) sucrose in water 31

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38 >>Gene cloning의 2단계 얻은 유전자를 vector에 삽입한다 38

39 Vector의기능 1) 세포 내에서 자가복제(self-replication) 을 합니다 Vector로쓰는DNA들은 세포 내에서 자가복제를 한다. 박테리아 세포 내에는 박테리아가 고유하게 가지고 있는 chromosomal DNA가있다. 한 세포당 하나 존재. Vector는 한 세포 내에서도 스스로 복제하여 수많은 copy가존재할수있다. 이런 성질을 실험에 이용한다. 2) 항생제를 이용한 선택(selection) 이 가능하다. Vector에 존재하는 항생제 내성 유전자를 이용하면 DNA가 세포 내로 주입되었는지 아닌지를 판별할 수 있다. Gene cloning에서는 내가 원하는 유전자가 세포 속으로 들어갔는지가 중요하기 때문에 이런 기능은 필수적이라고 할 수 있다. 이렇게 해서 세포 속으로 DNA가 들어간 세포만을 선별하는 것을 selection이라고 한다. 3) Multiple cloning site(mcs)를 이용할 수 있게 해 준다. 실험실에서 사용하는 vector는 일정부위에 제한효소 절단부위가 밀집된 부분이 있어서 cloning에 용이하다. 때로는 이 부분을 이용하여 자신이 원하는 construct를 자유자재로 만들 수도 있다. Multiple cloning site가없는vector는 이용 가치가 거의 없다. 4) Vector 부위를 이용한 DNA sequencing, 단백질발현등을할수있게해준다. 내가 원하는 유전자를 삽입하고 나면 여러 가지 실험이 용이 해진다. Vector에 존재하는 염기서열을 이용한 DNA sequencing을하기도편하고, vector에달린여러부분을이용하여단백질발현을할수도있다. 39

40 Vector의종류 Vector의 종류에는 plasmid, bacteriophage, cosmid, phagemid 등여러가지가 있다. 그 중 가장 널리 쓰이는 것은 plasmid 이다. Plasmid는 self-replicatable, extrachromosomal, double stranded, small circular DNA이다. 40

41 The lambda phage which infects E. coli demonstrates the cycles of a temperate phage. 41

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43 >>DNA ligation과 restriction enzyme Recombinant DNA 43

44 제한효소(restriction enzyme) 44

45 Restriction enzyme type II 제한효소에는 type I, II, III가 있으며 실험실에서는 주로 type II를사용한다. 1) 이름은 발견된 세균, serotype, 발견 순서로 명명한다. 예) Hinf III : H emophilus influenza type f, 세번째(III) 효소 2) 인식부위와 절단부위가 같고 특이적(specific)`이다. 3) Palindrome을주로인식한다. 4) 절단 후 모양은 세가지가 가능하다. 5'-overhang cohesive (sticky) end. 3'-overhang cohesive (sticky) end. Blunt end. 45

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49 PCR product의모습은다른blunt end DNA와는 다른다음과같은특징. 1) Primer의 5'쪽에는 phosphate가 없다. 2) Taq DNA polymerase는합성이끝난후3' 끝에 A를하나더붙인다. 49

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52 >>Gene cloning의 3단계 - 유전자가 삽입된 DNA를 세포 내 로 주입한다 52

53 <Transformation의개념> Transformation(형질전환)이란 DNA를 bacteria 세포 내로 주입하는 과정을 말한다. Prokaryote와 eukaryote에서는 DNA를 세포 내로 주입할 때 다음과 같이 조금 다른 용어를 사용한다. 이 실험에서는 prokaryote인 E.coli를 사용하므로 'transformation'을하는것이다. Cell DNA Term Prokaryote Plasmid Transformation Bacteriophage (virus) Infection Eukaryote Plasmid Transfection Virus vector Transfection 53

54 <Transformation 방법> Chemical method - Calcium phosphate를이용한방법 -Liposome을이용한방법 Physical method - Electroporation - Microinjection Virus를이용한방법 - Retrovirus - Adeno or adenoassociate virus 54

55 <Competent cell 이란?> Competent cell이란 정상적인 bacteria에 화학적 처리를 하여 DNA가잘들어갈수있게만든cell을 의미합니다. 화학처리에 쓰이는 시약은 다음과 같이 여러가지가 있으며이중가장중요한것은calcium chloride입니다. 1. Calcium Chloride 2. Manganase Chloride 3. Hexamminecobalt Chloride 4. Dimethyl Sulfoxide (DMSO) 55

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57 <Transformation 과정 > 57

58 1) Replication origin 2) Antibiotics resistance gene 3) Multiple cloning site(mcs)와 LacZ' 58

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62 (1) IPTG (Isopropyl-B-D-1-Thiogalactoside)는 LacZ gene inducer역할을 합니다. Lactose 대신 inhibitor와 결합하지만 분해되지 않습니다. (2) X-Gal (5-bromo-4-chloro-3-indolyl-D-galactopyranoside)은 lactose 대신 beta-galactosidase에 의하여 대사되는 물질입니다. 일종의 변형된 galactose sugar로서 원래 무색이지만 beta-galactosidase에 의하여 대사되면 푸른색을 나타낸다. 62

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67 >>Gene cloning의 4단계 올바른 clone을 선택한다 1) 우선 PCR product가 순수한 것이 아닙니다 67

68 Plasmid 분리 방법-Alkali lysis method 68

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70 <Plasmid 분리에 사용하는 시약 > Solution I 50 mm glucose 25 mm Tris-Cl, ph mm EDTA Solution II 0.2 N NaOH 1% SDS (sodium dodecyl sulfate) Solution III 5 M potassium acetate, glacial acetic acid 70

71 <Plasmid 분리에 사용하는 시약 > Solution I 50 mm glucose 25 mm Tris-Cl, ph mm EDTA EDTA는 세포벽의 integrity를 유지하는 데 필수적인 calcium ion을 제거하여 세포벽이 군데군데 무너지게 한다. 이때 glucose는 삼투압을 유지시켜 세포의 외형을 유지시켜 줍니다. 뒤에서 설명하겠지만, 이 과정에서 실험상 vortex를 해야 하는데 이때 세포가 완전히 깨지게 되면 chromosomal DNA가 잘게 깨지게 되어 plasmid DNA와 구분할 수 없게 됩 니다. 따라서 이렇게 세포를 유지시켜가면서 세포벽만 깨는 것입니다. 71

72 Solution II 0.2 N NaOH 1% SDS (sodium dodecyl sulfate) SDS는 ionic detergent로세포막을깨는일을합니다. NaOH는 DNA를 denaturation시킨다. Chromosomal DNA가잘게부서지지않게조심스럽 게처리. Solution III 5 M potassium acetate, glacial acetic acid Renature시키는 산성용액입니다. 이렇게 해서 Chromosomal DNA는 SDS와 potassium과함께엉김. 72

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74 DNA는 적당한 salt 농도와 적당한 alcohol 농도 하에서 침전. DNA 침전에 쓰이는 조건들은 다음과 같다. 1. Ethanol : 2 ~ 2.5 volume final 0.3 M sodium acetate, ph 5.2 : commonly used final 0.2 M sodium chloride DNA containing SDS final 2 M ammonium acetate triphosphate removal inhibits T4 polynucleotide kinase and TdT final 0.8 M lithium chloride RNA precipitation, very soluble in ethanol inhibits reverse transcription 2. Isopropyl alcohol : equal volume 74

75 DNA, RNA, Protein pellet TE buffer + RNase A 첨가 75

76 Phenol + Chloroform처리 수용성 상층액만을 분리 (위의 수용성층에 DNA 포함) 76

77 Sodium acetate와 Ethanol 첨가 TE buffer 에 DNA pellet 녹임 77

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79 Restriction enzyme mapping (제한효소 지도) 79

80 반응조건 Plasmid DNA 1 ug 10x buffer 2 ul EcoRI 5 unit HindIII 5 unit water to 20 ul, 37 C, 1시간 80

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82 DNA sequencing 82

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88 <DNA sequencing gel> DNA sequencing gel은 다음과 같이 준비. Urea, acrylamide 용액, TBE, 증류수를 섞어 잘 녹인 다음 여과지로 한 번 거르면 된다. Gel cast를 모두 준비한 다음에 ammonium persulfate와 TEMED를 넣으면 굳기 시작한다. DNA sequencing gel은 한base 차이를 구분 하고 해상도를 높이면서 denaturing 상태를 유지하기 위한 다음과 같은 특성이 있다. 7 M Urea, 8% Acrylamide, TBE buffer Denaturing polyacrylamide gel electrophoresis(page) Long distance(40 cm) and thin(0.35 mm) High voltage electrophoresis(2,000 volts) Urea, formamide, formaldehyde와 같은 시약은 DNA의 Tm 값을 낮추는 시약들. 이 시약들이 들어간 상태에서 2,000 volts 의 전기영동을 하게 되면 gel이 약55 C 정도로 heating되면서 DNA 가 denaturation 상태로 내려간다. 88

89 <Sequencing Gel Mix > Urea 42 g 40% (38:2) Acrylamide : bisacrylamide 20 ml 20x TBE 5 ml Water to 100 ml 30% Ammonium persulfate 260 ul TEMED 75 ul 89

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99 Cellular differentiation: The structural and functional divergence of cells as they become specialized during a multicellular organism s development; dependant on the controlof gene expression. <-> Dedifferentiation(탈분화) 99

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