Journal of Life Science 2015 Vol. 25. No. 6. 638~645 ISSN (Print) 1225-9918 ISSN (Online) 2287-3406 DOI : http://dx.doi.org/10.5352/jls.2015.25.6.638 Biological Activities of Mesembryanthemum crystallinum (Ice plant) Extract Sang Yull Lee 1, Hyeun Deok Choi 2,3, Sun Nyoung Yu 2,3, Sang Hun Kim 2, Seul Ki Park 2 and Soon Cheol Ahn 2,3 * 1 Department of Biochemistry, Pusan National University School of Medicine, Yangsan 626-870, Korea 2 Department of Microbiology and Immunology, Pusan National University School of Medicine, Yangsan 626-870, Korea 3 Immunoregulatory Therapeutics Group in Brain Busan 21 Project, Pusan National University, Yangsan 626-870, Korea Received December 2, 2014 /Revised June 19, 2015 /Accepted June 22, 2015 This study analyzed the physiological quality of Mesembryanthemum crystallinum (ice plant) extract. M. crystallinum is a succulent plant found in Africa, southern Europe, North America, South America, and Australia. It has known antidiabetic, antioxidant, and activation of lipid metabolism effects. Extracts from M. crystallinum were prepared with methanol (MCM), ethanol (MCE), hot water (MCHW), and methanol after hot water (MCHM) extractions. The yields of MCM, MCE, MCHW, and MCHM were 0.37, 0.33, 0.50, and 0.07%, respectively. To determine the biological activities of the extracts, mushroom tyrosinase, pancreatic lipase, 1,1-diphenyl-2-picryl hydrazyl (DPPH) radical scavenging, nitric oxide (NO) production, and α-glucosidase assays were conducted. The DPPH radical scavenging activity of the MCHW extract was 62.9% at a concentration of 400 μg/ml, which was the highest of all the extracts. The MCM extract showed the highest inhibition activity of α-glucosidase and NO production (56.6 and 57.2%, respectively). The pancreatic lipase inhibition of the MCE extract was similar to that of the MCM extract, with significant inhibition of 90%. The mushroom tyrosinase inhibition of all the extracts was very low (approximately 30%). These results suggest that extracts from M. crystallinum have antioxidant, anti-inflammatory, antiobesity, and antidiabetic activities. Thus, it may have potential as a functional food product and therapeutic potential as an antidiabetic or antiobesity agent. Key words : Anti-diabetics, anti-obesity, ice plant, Mesembryanthemum crystallinum, nitric oxide production 서 최근 세계적으로 급격한 경제 발달로 인해 발생하는 스트레 스와 식습관의 서구화 및 불규칙성, 운동부족, 과음, 흡연 등으 로 인하여 고지혈증, 당뇨병 및 고혈압과 같은 생활습관 병이 증가하고 있다[2]. 이에 따라 현대인들의 well-being에 대한 관심이 고조되고 기능성 식품에 대한 수요가 증가하고 있다. 기능성 식품이란 인체에 유용한 기능성을 가진 원료나 성분을 사용하여 제조한 식품을 말한다[4, 13, 23]. 최근 연구에서는 천연물 유래의 phenolic compounds, carotenoids, flavonoids, tocophenol 등의 생리활성물질을 섭취함으로써 각종 생활습 관 병 예방과 개선에 많은 도움이 된다는 결과가 보고되었다 [8]. Ice plant (Mesembryanthemum crystallinum)는 건조지역에 Authors contributed equally. *Corresponding author *Tel : +82-51-510-8092, Fax : +82-55-382-8090 *E-mail : ahnsc@pusan.ac.kr This is an Open-Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution Non-Commercial License (http://creativecommons.org/licenses/by-nc/3.0) which permits unrestricted non-commercial use, distribution, and reproduction in any medium, provided the original work is properly cited. 론 서 주로 자생하며, 다육식물로서 발아율이 낮고, 성장속도가 느리며, 재배가 쉽지 않지만 고 기능성 채소로 유럽과 일본에 서는 각광받고 있고, 최근 국내에서 대량재배에 성공하여 공 급이 증가하였다. Ice plant는 우기에 발아하여 C 3식물로서 광 합성하며 성장하다가 CAM형 식물로 전환하여 성장하는 식물 로서 이때 잎 표면에 염분을 배출하여 얼음처럼 보이는 bladder cell을 형성한다. Bladder cell에는 D-pinitol과 β-carotene 과 같은 많은 미네랄을 함유하여 항산화 효능, 혈당저하 효과, 항균효과, 지질생성저해 효과 등 다양하고 우수한 기능성 생 리활성이 있는 것으로 보고되고 있다. 특히, D-pinitol은 천연 혈당조절 성분으로서 myo-inositol의 구조 이성질체인 chiro-inositol의 3번 탄소에 있는 methyl기가 결합되어 있는 형태 인데 체내에서 chiro-inositol로 전환되어 인슐린 경로를 자극 하여 혈중의 포도당이 세포 내로 유입되도록 하여 혈당량을 감소시킨다[5, 28]. 따라서 D-pinitol은 체내에서 포도당의 흡 수를 조절하여 혈관 내에 급격한 포도당 농도의 상승을 막아 혈당 조절에 도움을 주어 당뇨병 치료에 도움이 될 것으로 보고되고 있다. 본 연구에서는 ice plant의 methanol 추출물, ethanol 추출 물, 열수 추출물, 열수 추출 후 methanol 추출물의 항산화, 항 당뇨, 항비만, 미백 활성을 연구하여, 건강지향적 식품 개발을 위한 기초연구를 수행하였다.
Journal of Life Science 2015, Vol. 25. No. 6 639 재료 및 방법 실험 재료 및 시약 Ice plant (Mesembryanthemum crystallinum)는 진주의 LFT에서 제공한 것을 사용하였다. 각 분리 단계에 이용된 유 기용매는 (주) SK 케미칼(Seoul, Korea)에서 구입하여 사용하 였다. 1,1-Diphenyl-2-picryl hydrazyl (DPPH), α-glucosidase, p-nitrophenyl α-d-glucopyranoside (pnpg), pancreatic lipase (porcrine pancrease), p-nitrophenyl palmitate (pnpp), mushroom tyrosinase, acarbose, ascorbic acid, orlistat, kojic acid 등은 Sigma-Aldrich Co. (St. Louis, USA)에서 구입하였 다. Ice plant 추출물의 제조 건조된 ice plant 1 g을 각 용기에 넣고, methanol, ethanol을 각각 100 ml씩 넣어서 실온에서 하루 동안 추출하고 여과하여 상등액만을 취해 각각 methanol 추출물(MCM), ethanol 추출 물(MCE)을 얻었다. 한편, ice plant 1 g을 용기에 넣어 증류수 100 ml을 넣고, autoclaver 에서 100, 1분간 추출하고 여과하 여 얻은 열수 추출물(MCHW), 그 pellet에 methanol 100 ml을 넣어 실온에서 하루 동안 추출하여 열수 추출 후 methanol 추출물(MCHM)을 얻었다. 생리활성 측정 DPPH free radical 소거 활성 추출물의 항산화 활성은 DPPH free radical 소거법을 이용 하여 측정하였다[15, 21]. 1,1-Diphenyl-2-picryl hydrazyl (DPPH) 시약을 1.5x10-4 M로 ethanol에 녹여 DPPH 시약을 만들었으며 4 냉장고에 빛이 닿지 않도록 하여 보관하였다. DPPH 시약 180 μl에 시료 20 μl를 넣어 실온의 암실에서 30분 간 반응을 한 후, VERSA MAX microplate reader (Molecular Devices, Toronto, Canada)를 이용하여 510 nm에서 흡광도를 측정하였다. 대조구로는 추출물 대신 추출용매를 가하여 측정 하였고, 저해 활성은 DPPH free radical 소거활성(%)=[1- {(SAbs-BAbs)/(CAbs-BAbs)}] 100 (CAbs: 대조구 흡광도, SAbs: 시료 흡광도, BAbs: 시약 무첨가구의 흡광도)으로 계산 하였다. Positive control로는 ascorbic acid를 사용하였다. Pancreatic lipase 저해활성 Pancreatic lipase의 활성은 Kim 등[18]의 방법을 변형하여 기질로 사용된 p-nitrophenyl palmitate (pnpp)가 lipase 효소 에 의하여 p-nitrophenol로 가수분해되는 정도를 이용하였다. 1.5 ml tube에 시료 10 μl와 100 mm Tris-HCl (ph 8.5) buffer 를 100 μl씩 넣고 2 mm pnpp를 80 μl씩 넣었다. Lipase는 10 μl (10 mg/ml)씩 넣고 37 warm bath에서 30분간 반응하 고, ice에 10분간 반응 정지시킨 후, 13,000 rpm으로 1분간 원 심분리 하여 그 상층액을 96 well plate에 넣어 VERSA MAX microplate reader를 이용하여 405 nm에서 흡광도를 측정하였 다. 대조구로는 추출물 대신 추출용매를 가하여 측정하였고, 저해 활성은 lipase 저해활성(%)=[1-{(SAbs-BAbs)/(CAbs -BAbs)}] 100 (CAbs: 대조구 흡광도, SAbs: 시료 흡광도, BAbs: 시약 무첨가구의 흡광도)으로 계산하였다. Positive control로는 orlistat를 사용하였다. Mushroom tyrosinase 저해활성 Tyrosinase 활성은 Hearing의 방법[12]을 변형하여 L-tyrosine이 tyrosinase에 의해 3,4 dihydroxy-l-phehylalanine (L-DOPA) quinone으로 전환되는 것을 측정하였다. 1 mm L-tyrosine과 50 mm sodium phosphate buffer (ph 6.5)와 증 류수를 6:6:4(v/v/v)의 비율로 넣은 tyrosine buffer 160 μl, 시 료 10 μl, mushroom tyrosinase (200 U/ml) 30 μl를 96 well plate에 넣어 37 C에서 30분간 반응 시켰다. 반응 후 변화된 색을 VERSA MAX microplate reader를 이용하여 475 nm에서 흡광도를 측정하였다. 대조구로는 추출물 대신 추출용매를 가 하여 측정하였고, 저해 활성은 tyrosinase 저해활성(%)=[1- {(SAbs-BAbs)/(CAbs-BAbs)}] 100 (CAbs: 대조구 흡광도, SAbs: 시료 흡광도, BAbs: 시약 무첨가구의 흡광도)으로 계산 하였다. Positive control로는 kojic acid를 사용하였다. α-glucosidase 저해활성 α-glucosidase 저해활성 측정은 Kim의 방법[19]을 변형하 여 측정하였다. 시료 6 μl와 100 mm sodium phosphate buffer (ph 6.8) 24 μl를 혼합하고, α-glucosidase 효소액(0.25 U/ml) 30 μl와 2.5 mm p-nitrophenyl α-d-glucopyranoside (pnpg) 60 μl를 넣고 37 에서 30분간 반응시켰다. 반응 후, 10분간 ice에서 반응을 정지시킨 후, 13,000 rpm에서 1분간 원심분리 하고, 96 well plate에 넣어 VERSA MAX microplate reader를 이용하여 405 nm에서 흡광도를 측정하였다. 대조구로는 추출 물 대신 추출용매를 가하여 측정하였고, 저해 활성은 α-glucosidase 저해활성(%)=[1-{(SAbs-BAbs)/(CAbs-BAbs)}] 100 (CAbs: 대조구 흡광도, SAbs: 시료 흡광도, BAbs: 시약 무첨가 구의 흡광도)으로 계산하였다. Positive control로는 acarbose 를 사용하였다. Nitric oxide (NO) 저해활성 생성된 NO의 농도는 배양액 내의 nitrite (NO₂ ) 농도를 Griess reagent와 반응을 측정하였다[9, 25]. Mouse macrophage cell line인 Raw 264.7 cell을 DMEM 배지에서 배양하고 2 10⁵ cells/well 로 96 well에 분주하였다. 12시간 뒤 phenol red- free DMEM 배지로 바꿔주고, lipopolysaccharide (LPS, 1 μg/ ml)를 처리한다. 1시간 뒤에 각 시료를 2 μl 넣고 24시간 배양한 뒤, 상등액을 취하여 Griess reagent인 0.1% NED (N-(1- napthyl) ethylenediamine hydrochloride in dissolved 60% acetic acid)와 1% sulfanilamide (in dissolved 40% acetic acid)를 동량으로 섞은 시약을 100 μl 넣고, 10분간 상온에서
640 생명과학회지 2015, Vol. 25. No. 6 반응시킨 후, VERSA MAX microplate reader로 540 nm에서 흡 광도를 측정하였다. 추출물 대신 추출용매를 가한 것을 대조 구로 하여 NO 생성 저해활성(%)은 다음과 같이 나타내었다. NO 생성 저해활성(%)= (1-SAbs / CAbs) 100 (CAbs: 대조 구 흡광도, SAbs: 시료 흡광도)으로 계산하였다. 세포 독성 Nitric oxide 생성 실험에 필요한 세포 배양액을 회수하고 남은 배지 및 세포를 사용하여 MTT assay를 하였다[14]. MTT 시약은 thiazolyl blue tetrazolium bromide를 최종농도 1 mg/ml가 되도록 PBS에 녹인 후 사용하였다. 제조한 MTT 시 약을 100 μl씩 첨가하여 2시간 동안 37 에 반응시켜 MTT가 환원되도록 하였다. 그 후, 배양액을 제거하고 DMSO를 첨가 하여 살아있는 세포의 mitochondria에서 MTT시약과의 반응 으로 생성된 formazan이 녹아있는 시료액을 VERSA MAX microplate reader를 이용하여 570 nm에서 흡광도를 측정하여 대조구에 대한 세포 생존율을 백분율로 표시하였다. 세포 생 존율(%)=(SAbs / CAbs) 100 (CAbs: 대조구 흡광도, SAbs: 시료 흡광도)으로 계산하였다. 통계처리 모든 실험의 결과는 3번 반복 수행하여 얻어진 것으로, 통계 분석은 ANOVA에 의해 분석하여 mean ± S.D로 표시하였고, 통계적 유의성은 p 0.05로 판정하였다. 추출 수율 Table 1. Extraction of Mesembryanthemum crystallinum (Ice Plant) Samples 결 Ice plant 1 g을 분쇄하여, methanol (MCM), ethanol (MCE), 열수(MCHW), 열수 추출 후 methanol (MCHM) 로 추출한 결과, 각 추출물의 추출 함량은 Table 1과 같았다. 각 추출물의 추출 수율은 MCM은 0.37%, MCE은 0.33%, MCHW Methanol extract (MCM) Ethanol extract (MCE) Hot water extract (MCHW) Methanol extract after hot water extraction (MCHM) Extraction yield (mg) 3.7 3.3 5.0 0.7 Each sample was extracted with 1 g of dried ice plant. MCM : M. crystallinum extracted with methanol, MCE : M. crystallinum extracted with ethanol, MCHW : M. crystallinum extracted with hot water, MCHW: M. crystallinum extracted with methanol after how water extraction. 과 은 0.5%, MCHM은 0.07%로 나타났으며 열수 추출물의 추출 수율이 가장 높게 나타났고, 열수 추출 후 methanol로 추출한 MCHM의 경우 추출물의 수율이 가장 낮았다. 1,1-Diphenyl-2-picrylhydrazyl (DPPH) free radical 소거 활성 항산화 활성 측정방법 중 하나인 DPPH를 이용하여 전자 공여능을 측정하는 방법으로서 환원력이 클수록 강력한 항산 화제가 된다. DPPH는 짙은 자색을 띄는 비교적 안정한 free radical로서, 방향족, 아민류 등에 의해 환원되어 항산화 물질 을 검색하는데 이용되고 있다[3, 7, 16, 30]. Ice plant 추출물 (MCM, MCE, MCHW, MCHM)의 농도를 100, 200, 400 μg/ ml으로 하여 소거능을 분석한 결과 Fig. 1과 같았다. MCM, MCE, MCHM, MCHW 추출물 400 μg/ml의 농도에서는 44.8%, 51.3%, 33.5%, 62.9%의 DPPH free radical 소거활성을 보였다. 이를 통해 ice plant 의 각 추출물이 항산화 활성을 가지는 것으로 추정된다. α-glucosidase 저해활성 소장에 존재하는 이당류의 소화효소인 α-glucosidase는 소 장 상피세포의 brush-border membrane에 존재하는 소화효소 로서 이당류를 단당류로 분해시켜 소장에서 흡수하게 한다. α-glucosidase를 저해하면 소장에서의 포도당 흡수를 억제시 켜, 식후 혈당의 급격한 증가를 막아 혈당을 조절해 준다[1]. Ice plant 추출물(MCM, MCE, MCHW, MCHM)을 이용하여 α-glucosidase 저해활성을 조사하기 위하여 각 추출물을 0.5, 1, 2 mg/ml의 농도에서 실험한 결과(Fig. 2), MCHM 추출물에 서 가장 높은 α-glucosidase 저해활성이 나타났고 2 mg/ml의 농도에서는 positive control로 사용된 acarbose와 유사한 56.6% 저해활성을 보였다. 한편 2 mg/ml의 MCM, MCE 추출 물 에서도 39.5%, 13.6%의 저해활성을 보였다. 따라서 ice plant 추출물이 α-glucosidase에 대한 저해활성을 나타내어 항 당뇨 효과가 기대되었다. Nitric oxide (NO) 생성 저해활성 Macrophage는 면역반응에서 중요한 역할을 수행하고, lipopolysaccharide (LPS)에 의한 자극은 다양한 염증 매개 물질 을 유도하여, NO 형성과정으로 이어지게 되기 때문에 NO 생성의 억제는 염증생성을 저해하는데 중요한 지표가 된다 [24, 29, 31]. Ice plant 추출물의 염증 억제 활성을 측정하기 위하여 mouse macrophage cell line인 Raw 264.7 cell에 LPS (1 μg/ml)로 처리한 후, ice plant 추출물(MCM, MCE, MCHW, MCHM)을 100, 200, 400 μg/ml 로 처리하여 생성된 nitrite (NO₂ )의 양을 측정하였다(Fig 3). Raw 264.7 cell에 LPS를 처리한 군은 무처리 군에 비해 NO의 생성이 약 5배 증가하였다. LPS를 처리 한 후 ice plant 추출물을 400 μg/ml 농도로 각각 처리했을 때, MCM 추출물, MCE 추출물은 NO 생성을 57.2%, 54.9%로 억제하였고, MCHM 추출물에서는
Journal of Life Science 2015, Vol. 25. No. 6 641 Fig. 1. DPPH free radical scavenging activity of Mesembryanthemum crystallinum extracts. MCM : M. crystallinum extracted with methanol, MCE : M. crystallinum extracted with ethanol, MCHW : M. crystallinum extracted with how water, MCHW: M. crystallinum extracted with methanol after hot water extraction. Ascorbic acid was used as a positive control. Data represent the mean ± SD (n=3 in each group) from three separate experiments. ***p<0.001 compared with control. Fig. 2. Inhibitory activity of Mesembryanthemum crystallinum extracts on α-glucosidase. MCM : M. crystallinum extracted with methanol, MCE : M. crystallinum extracted with ethanol, MCHW : M. crystallinum extracted with how water, MCHW: M. crystallinum extracted with methanol after hot water extraction. Acarbose was used as a positive control. Data represent the mean ± SD (n=3 in each group) from three separate experiments. *p<0.01, ***p<0.001 compared with control. N.S = non-significantly. 73.5%가 억제 되는 것을 확인하였다. NO 생성 저해가 세포독 성에 기인하는 것인지를 확인하기 위하여 MTT assay를 통해 세포독성을 확인한 결과, 세포독성은 나타나지 않았다. 따라 서 ice plant의 성분이 macrophage 에서 LPS에 의해 유도된 NO 생성을 저해하여 항염증 효과가 있을 것으로 사료된다. Mushroom tyrosinase 저해활성 멜라닌 합성과정에서 tyrosinase에 의하여 L-tyrosine이 가 역적 산화반응을 통하여 3,4 dihydroxy-l-phehylalanine (L-DOPA)로 만들고, L-DOPA quinone을 만든다[20]. Ice plant 추출물(MCM, MCE, MCHW, MCHM)을 250, 500, 1,000 μg/ml으로 하여 mushroom tyrosinase 저해활성을 측정하였
642 생명과학회지 2015, Vol. 25. No. 6 A B Fig. 3. Inhibitory activity of Mesembryanthemum crystallinum extracts on NO production in Raw 264.7 cell line. (A) NO activity in Raw 264.7 cell line (B) Cell viability in Raw 264.7 cell line. Data represent the mean ± SD (n=3 in each group) from three separate experiments. ***p<0.001 compared with control. N.S = non-significantly. 다(Fig. 4). 그 결과, MCHW 추출물을 제외한 MCM, MCE, MCHM 추출물은 약 30%의 낮은 tyrosinase 저해 활성을 보였 다. 따라서, ice plant는 저해 활성은 낮지만 melanin 합성을 저해하여 미백작용에 효과가 있을 것으로 사료된다. Pancreatic lipase 저해활성 Pancreatic lipase는 지방 가수분해 효소로 triglyceride의 ester 결합을 가수분해 시켜 glycerol과 fatty acid으로 분해하 는 역할을 한다. Lipase에 의해 monoglyceride와 fatty acid로 분해된 지방은 소장상피세포에서 triglyceride로 재 합성 되어 순환혈액 속에 들어가 조직에 보내진다. 지방 흡수의 중요한 역할을 하는 lipase의 활성저해를 통하여 지방이 체내에 소화, 흡수를 저해 할 수 있다[6]. Pancreatic lipase 저해효과를 확인 하기 위해, ice plant 추출물(MCM, MCE, MCHW, MCHM)을 250, 500, 1,000 μg/ml의 농도로 처리하여 저해활성을 측정하 였다(Fig. 5). 그 결과, MCM 추출물, MCE 추출물에서 농도 의존적으로 강한 저해활성을 보였고, MCHW 추출물, MCHM 추출물에서는 lipase 저해활성이 나타나지 않아서 lipase 저해 하는 성분이 열에 불안정 할 것으로 예상된다. 따라서 ice plant 추출물은 pancreatic lipase에 대해 저해활성을 보여 항 비만 효과가 기대되었다. 고 찰 본 연구는 ice plant의 생리활성을 측정하여 기능성 물질로 서의 가능성을 조사하고자 하였다. Methanol, ethanol, 열수, 열수 추출 후 methanol로 추출하여 DPPH, pancreatic lipase, mushroom tyrosinase, α-glucosidase, NO 생성 저해활성과 같은 여러 가지 생리활성을 측정 하였다. 식물에서의 항산화 활성은 주로 폴라보노이드, 폴리페놀, 탄닌, 페놀릭 테르펜 등
Journal of Life Science 2015, Vol. 25. No. 6 643 Fig. 4. Inhibitory activity of Mesembryanthemum crystallinum extracts on mushroom tyrosinase activity. MCM : M. crystallinum extracted with methanol, MCE : M. crystallinum extracted with ethanol, MCHW : M. crystallinum extracted with how water, MCHW: M. crystallinum extracted with methanol after hot water extraction. Kojic acid was used as a positive control. Data represent the mean ± SD (n=3 in each group) from three separate experiments. ***p<0.001 compared with control. Fig. 5. Inhibitory activity of Mesembryanthemum crystallinum extracts on pancreatic lipase activity. MCM : M. crystallinum extracted with methanol, MCE : M. crystallinum extracted with ethanol, MCHW : M. crystallinum extracted with how water, MCHW: M. crystallinum extracted with methanol after hot water extraction. Orlistat was used as a positive control. Data represent the mean ± SD (n=3 in each group) from three separate experiments. *p<0.01 and ***p<0.001 compared with control. N.S = non-significantly. 과 같은 페놀릭 성분에 의해 나타나며[17, 32, 34], 페놀릭 성분 의 용매별 추출 수율은 식물마다 다르게 나타나지만, 식물체 에 열처리를 할 경우, 결합형의 폴리페놀 성분이 유리형으로 되어 활성이 증가한다고 보고되었다[10]. 따라서 MCHW 추출 물에서 가장 높은 항산화 활성을 보인 것은, ice plant의 열수 추출물 또한 열처리로 인하여 조직과 강하게 결합되어 있던 유효성분이 유리형으로 전환되어 항산화 효과가 증가된 것으 로 생각된다. 차후에 ice plant의 폴리페놀과 폴라보노이드 화 합물의 함량에 대한 연구를 추가로 진행할 예정이다. NO 생성 억제능에서는 MCM, MCE, MCHM와 같이 유기용매에 의한 추출물에서 농도 의존적으로 저해활성을 보여 염증 저해 활성 이 예상된다. NO는 정상 생리 상태에서 신호전달 및 박테리아
644 생명과학회지 2015, Vol. 25. No. 6 를 죽이는 등 생리적 역할을 하지만 과도한 형성은 염증을 유발시켜 조직의 손상, 유전적 변이 등을 일으킨다[22, 33]. 따 라서 NO 생성의 저해는 염증반응의 조절 치료제로서의 가능 성이 있고, ice plant의 methanol과 ethanol 추출물은 농도 의 존적으로 inos 발현을 저해하여 NO 생산을 감소시킬 것으로 예상된다. Pancreatic lipase 저해활성에서도 MCM, MCE, MCHM 추출물에서 농도 의존적으로 저해 활성이 나타났지 만, positive control인 orlistat에 비해 현저히 낮은 저해율을 보였다. 하지만, 천연 식물 추출물의 경우 단일물질로 정제되 면 활성이 높아지는 경향이 보이므로 활성 물질의 추출 및 분리로 더욱 효과적인 lipase 저해능을 가질 것으로 보인다. 따라서 기존의 비만 치료제의 부작용을 대체 할 수 있는 천연 항비만 물질로 기대되었다. α-glucosidase 저해활성을 조사한 결과, MCHM 추출물에서 강한 활성을 보였으나, acarbose에 비해 낮은 α-glucosidase 저해활성을 보였다. Ice plant에서는 D-pinitol과 inositol이 풍부한 것으로 알려졌고, HPLC를 사용 하여 ice plant 추출물에 D-pinitol이 포함된 것을 확인 할 수 있었다(data not shown). 그러나 D-pinitol이 인슐린의 역할을 하여 혈당을 낮추는데 도움을 준다고 알려져[26, 27] α-glucosidase의 저해활성이 기대되었으나 저해활성이 강하지는 않 았다. Ice plant의 α-glucosidase 저해활성과 D-pinitol의 존재 로 당뇨병 치료나 예방에 효과가 좋은 기능성 식품의 가능성 이 기대되었다. 결론적으로 ice plant는 pancreatic lipase, α-glucosidase, NO 생성 등을 저해하고, DPPH free radical 소거능이 우수하 여, 항산화 물질로서 비만, 당뇨, 염증 치료용 기능성 식품으로 서의 가능성을 보여 이를 위한 추가 연구를 진행할 예정이다. 감사의 글 이 논문은 부산대학교 자유과제 학술연구비(2년)에 의하여 연구되었습니다. References 1. Adisakwattana, S., Chantarasinlapin, P., Thammarat, H. and Yibchok-Anun, S. 2009. A series of cinnamic acid derivatives and their inhibitory activity on intestinal alpha-glucosidase. J. Enzyme Inhib. Med. Chem. 24, 1194-1200. 2. Ahn, I. S., Park, K. Y. and Do, M. S. 2007. Weight control mechanisms and antiobesity functional agents. J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 36, 503-513. 3. Ancerewicz, J., Migliavacca, E., Carrupt, P. A., Testa, B., Bree, F., Zini, R., Tillement, J. P., Labidalle, S., Guyot, D., Chauvet-Monges, A. M, Crevat, A. and Le Ridant, A. 1998. Structure-property relationships of trimetazidine derivatives and model compounds as potential antioxidants. Free Radic. Biol. Med. 25, 113-120. 4. Bahn, K. N., Lee, C. H., Cho, T. Y., Lee, J. Y., Lee, Y. J. and Chae, G. Y. 2005. Determination of phosphatidylcholine in Korea functional foods contatining lecitins using HPLC with evaporative light-scattering detector (ELSD). J. Fd. Hyg. Safety 20, 267-271. 5. Bates, S. H., Jones, R. B. and Bailey, C. J. 2000. Insulin-like effect of pinitol. Br. J. Pharmacol. 130, 1944-1948. 6. Birari, R. B. and Bhutani, K. K. 2007. Pancreatic lipase inhibitors from natural sources: unexplored potential. Drug Discov. Today 12, 879-889. 7. Bouftira, I., Abdelly, C. and Sfar, S. 2008 Characterization of cosmetic cream with Mesembryanthemum crystallinum plant extract: influence of formulation composition on physical stability and anti-oxidant activity. Int. J. Cosmet. Sci. 30, 443-452. 8. Cha, J. Y., Cho, Y. S., Kim, I., Anno, T., Rahman, S. M. and Yanagita, T. 2001. Effect of hesperetin, a citrus flavonoid, on the liver triacylglycerol content and phosphatidate phosphohydrolase activity in orotic acid-fed rats. Plant Foods Hum. Nutr. 56, 349-358. 9. Chiou, W. F., Chou, C. J. and Chen, C. F. 2001. Camptothecin suppresses nitric oxide biosynthesis in RAW 264.7 macrophages. Life Sci. 69, 625-635. 10. Choi, Y., Lee, S. M., Chun, J., Lee, H. B. and Lee, J. 2006. Influence of heat treatment on the antioxidant activities and polyphenolic compounds of Shiitake (Lentinus edodes) mushroom. Food Chem. 99, 381-387. 11. Dong, S., Jung, S. H., Moon, J. S., Rhee, S. K. and Son, J. Y. 2004. Antioxidant activities of clove by extraction solvent. J. Kor. Soc. Food Sci. Nutr. 33, 609-613. 12. Hearing, V. J. 1987. Mammalian monophenol monooxygenase (tyrosinase): purification, properties and reaction catalyzed. Meth. Enzymol. 142, 154-165. 13. Hong, Y. S., Lee, K. H., Lee, H. S., Lee, M. S., Jee, S. H. and Joung, H. J. 2007. Association between compliance with dietary guidelines and dyslipidemia among Koreans. Kor. J. Nutr. 40, 745-752. 14. Jeong, D. H., Kim, K. B. W. R., Kim, M. J., Kang, B. K. and Ahn, D. H. 2013. Anti-inflammatory activity of ethanolic extract of Sargassum micracanthum. J. Microbiol. Biotechnol. 23, 1691-1698. 15. Jun, H. I., Wiesenborn, D. P. and Kim, Y. S. 2011. Antioxidant activities of various solvent extracts from canola meal. Kor. J. Food Preserv. 18, 59-64. 16. Kang, M. H., Cho, C. S., Kim, Z. S., Chung, H. K., Min, K. S., Park, C. G. and Park, H. W. 2002. Antioxidative activities of ethanol extract prepared from leaves, seed, branch and aerial part of Crotalaria sessiflora L. Kor. J. Food Sci. Technol. 34, 1098-1102. 17. Kim, H. Y., Woo, K. S., Hwang, I. G., Lee, Y. R. and Jeong, H. S. 2008. Effects of heat treatments on the antioxidant activities of fruits and vegetables. Kor. J. Food Sci. Technol. 40, 166-170. 18. Kim, J. H., Kim, H. J., Kim, C. Y., Jung, H. Y., Kim, Y. O., Ju, J. Y. and Shin, C. S. 2007. Development of lipase inhibitors from various derivatives of monascus pigment produced by Monascus fermentation. Food Chem. 101, 357-364.
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