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대한진단검사의학회지제 28 권제 1 호 2008 Korean J Lab Med 2008;28:24-33 DOI 10.3343/kjlm.2008.28.1.24 원저 임상미생물학 5 년간울산대학교병원에서 HPLC 법을이용한 Mycobacteria 의동정과균종분포 정윤성 1 김성률 1 장철훈 2 이선호 1 울산대학교병원진단검사의학교실 1, 부산대학교의과대학진단검사의학교실 2 Identification of Mycobacteria Species by HPLC and Species Distribution during Five Years at Ulsan University Hospital Joseph Jeong, M.D. 1, Sung-Ryul Kim, M.D. 1, Chulhun L. Chang, M.D. 2, and Seon Ho Lee, M.D. 1 Department of Laboratory Medicine 1, Ulsan University College of Medicine, Ulsan; Department of Laboratory Medicine 2, Pusan National University School of Medicine, Busan, Korea Background : Infections caused by mycobacteria have been significantly increasing. Due to the difficulty of making a decision about the pathogenicity of mycobacteria, species-level identification is very important for patients diagnosis and treatment. The purpose of this study was to identify mycobacteria species using a high performance liquid chromatography (HPLC) method and to provide an initial database for the distribution of mycobacteria in Korea. Methods : Acid fast bacteria isolated from 3,107 clinical specimens were identified by mycolic acid analysis using HPLC. The HPLC patterns were compared with those of standard mycobacteria species. Results : The HPLC patterns were divided into single, double, and triple cluster groups, each group comprising 9, 20, and 4 species, respectively. Mycobacteria and non-tuberculous mycobacteria (NTM) were identifies by HPLC at the rates of 99.5% and 95.6%, respectively. NTM was isolated in 12.4% of the mycobacteria positive specimens. This study also found that there were 20 different NTM species with the distribution of each species ranging from 0.3% to 15.9% of the total NTM. While the rate of NTM has been increasing in Korea, M. avium-intracellulare, M. fortuitum, and M. chelonae are relatively decreasing, and M. kansasii and M. gordonae are relatively increasing. Conclusions : HPLC method was highly discriminative for the identification of NTM in clinical specimens. (Korean J Lab Med 2008;28:24-33) Key Words : Mycobacteia, M. tuberculosis, Nontuberculous mycobacteria, HPLC 서 론 결핵균 (Mycobacterium tuberculosis complex) 및비결핵항산균 접수 : 2007년 10월 12일접수번호 : KJLM2076 수정본접수 : 2007년 10월 23일게재승인일 : 2007년 11월 7일교신저자 : 이선호우 682-714 울산광역시동구전하동 290-3 울산대학교병원진단검사의학과전화 : 052-250-7273, Fax: 052-250-8269 E-mail: joseph@uuh.ulsan.kr, 690519@hitel.net (non-tuberculous mycobacteria, NTM) 에의한감염증의증가추세는전세계적으로중요한관심의대상이되고있다. 후천성면역결핍증의증가와면역억제요법의일반화에따라지난 20년간결핵균에의한감염증은의미있게증가하고있으며 [1-4], 최근에는면역억제환자뿐만아니라정상면역능을가진사람들에서도결핵균및 M. avium, M. intracellulare, M. kansasii, M. xenopi, M. fortuitum, M. scrofulaceum, M. malmoense, M. genavence 등의 NTM의검출빈도가증가하고있다 [5-8]. 또한 NTM은생활환경에널리분포하고있어서임상검체로부터분리되어도병원성 24

HPLC 법을이용한 Mycobacteria 의동정 25 여부를판단하기힘들며 [9, 10], 일반적으로결핵균에유효하다고알려진항결핵제들이 NTM에는효과가없는경우가많고, NTM 의종류에따라치료가다른경우가많으므로 [11-14], mycobacteria의균종감별은환자의적절한치료에대단히중요하다. 현재까지우리나라의대한결핵협회와 3차의료기관을포함한대부분의의료기관에서는 mycobacteria의균종감별을위해전통적인생화학법이나중합효소연쇄반응법, 유전자소식자법등을많이사용하고있으나 [4, 15-17], 이방법들은동정시간이오래걸리거나, 오염에의한위양성률이높거나, 다양한 NTM을모두검출할수없거나, 각균종별로검사를시행해야하는단점들이있다 [15-21]. 반면, high performance liquid chromatography (HPLC) 법은결핵균및다양한 NTM의균종특이적 mycolic acid의분해산물을분석하여동정하는방법으로상기의단점들이극복된정확한방법으로알려져있다 [22-26]. 또한우리나라에서의 NTM 감염증의빈도는정확히알려져있지않으며, 임상검체에서분리되는 mycobacteria의종별빈도에관한보고도많지않다. 이에본연구에서는 HPLC법을이용하여결핵균및다양한 NTM을동정하여임상검체에서의 mycobacteria의균종별분포를파악하여우리나라에서의결핵균및다양한 NTM의분포에대한기초자료로활용하고자하였다. 1. 대상 대상및방법 2002년 1월부터 2006년 12월까지 5년간울산대학교병원진단검사의학과에항산균배양이의뢰된검체중초진이거나최근 6개월간동일검체의항산균배양검사에서음성으로판정되었던환자에서초기 3회의항산균배양검사로제한하여, 12,821명의 25,044검체들을검체종류에관계없이모두항산균배양의 Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI) 권고안에따라고체배지인 Eiken 3% 오가와배지 (Eiken, Tokyo, Japan) 와액체배지인 Mycobacteria Growth Indicator Tube (Becton Dickinson, Baltimore, Maryland, USA) 에각각접종하여두배지중한개이상의배지에서항산균배양양성으로확인된 1,342명의 3,107검체를대상으로하였다. 2. Mycobacteria 의동정 항산균배양양성으로판정된경우, mycobacteria의균종특이적 mycolic acid를 HPLC법으로분석하여얻은패턴을표준균주 들의패턴과비교후동정하여균종분포를조사하였다 [22-26]. 표준균주들은 American Type Culture Collection (ATCC) 표준균주 28종과 Korean Type Culture Collection (KTCC) 표준균주 5종, 총 33종을사용하였다 (Table 1). HPLC 분석에사용된구성물로용제를분출시키는펌프와기화시키는분사기를포함하는본체는 waters 2690 seperation module (Waters, Milford, MA, USA) 을, 분리를위한컬럼은 reverse phase analytical cartridge column, 3.9 75 mm, packed with 3 m silica (Nova-Pak C18) 컬럼을, 검출을위한자외선검출기는 photodiode array detector (Waters, Milford, MA, USA) 를이용하였다. 내부고분자량및저분자량표준물질로는각각 - bromophenyl ester와 6,7-dimethoxy-4-coumarinylmethyl ester를사용하였다. 분석과정은먼저 methanolic potassium hydroxide를가하여 mycobacteria 세포를분해하여비누화시키고, 클로로포름을용매로지방산을추출하였다. 추출한성분에 potassium bicarbonate 를가하여기화시키고, 지방산의파생물을정제한후컬럼을통과시켜자외선검출기로 HPLC 패턴을검출하였다. 검출된 HPLC 패턴은모두저분자량과고분자량표준물질의 peak들사이에나타난특징적인 cluster 패턴을이용하여분류하였다. 각 cluster 그룹에속하는균주는각각의 cluster내의 peak 수, peak 유지시간및 peak 높이비율을기준으로표준균주들의 HPLC 패턴과비교하여최종동정하고균종분포를조사하였다. 항산균의 HPLC 패턴은 single-cluster 그룹에는 M. asiaticum, Table 1. Standard mycobacterial isolates used in this study Mycobacterium species Strain number Mycobacterium species Strain number M. abscessus ATCC 19977 M. marinum ATCC 927 M. acapulsensis KTCC 9501 M. mucogenicum ATCC 49650 M. agri ATCC 27406 M. nonchromo- ATCC 19530 genicum M. asiaticum ATCC 25276 M. peregrinum ATCC 14467 M. austroafricanum ATCC 33464 M. phlei ATCC 354 M. avium ATCC 25291 M. porcinum KTCC 9517 M. bovis ATCC 19210 M. pulveris KTCC 9518 M. celatum ATCC 51131 M. scrofulaceum ATCC 19981 M. chelonae ATCC 35752 M. simiae ATCC 25275 M. diernhoferi KTCC 9506 M. smegmatis ATCC 21701 M. flavescens ATCC 14474 M. szulgai ATCC 35799 M. fortuitum ATCC 6841 M. terrae ATCC 15755 M. gastri ATCC 15754 M. triviale ATCC 23292 M. gilvum KTCC 9512 M. tuberculosis ATCC 27294 H37Rv M. gordonae ATCC 14470 M. vaccae ATCC 15483 M. intracellulare ATCC 13950 M. xenopi ATCC 19250 M. kansasii ATCC 12478

26 정윤성 김성률 장철훈외 1 인 M. bovis, M. gastri, M. gordonae, M. kansasii, M. marinum, M. szulgai, M. triviale 및 M. tuberculosis complex 등의 9종, doublecluster 그룹에는 M. abscessus, M. acapulsensis, M. agri, M. avium, M. celatum, M. chelonae, M. diernhoferi, M. flavescens, M. fortuitum, M. gilvum, M. intracellulare, M. mucogenicum, M. nonchromogenicum, M. peregrinum, M. phlei, M. porcinum, M. scrofulaceum, M. smegmatis, M. terrae 및 M. xenopi 등의 20종, triple-cluster 그룹에는 M. austroafricanum, M. pulveris, M. simiae 및 M. vaccae 등의 4종이각각포함되었다. 네개이상의 peak cluster를가지는 multi-cluster 그룹은현재까지병원성유무가확인되지않은그룹에속하여제외하였다 [22]. HPLC 패턴이표준균주 33종의어느것과도일치하지않는경우 unclassified NTM으로분류하여균종분포에포함시켰다. 결 과 1. HPLC 법에의한 mycobacteria 의동정 Mycobacteria 표준균주 33종과항산균배양양성으로확인된 1,342명의 3,107검체의 HPLC 검사에서 mycolic acid peak들이모두저분자량과고분자량표준물질의 peak들사이에특징적인 single, double 및 triple-cluster로나타났다. 3,107검체중 3,090 검체 (99.5%) 의 HPLC 패턴은표준균주 33종중어느한패턴과일치하여이패턴의표준균주로동정하였다. 나머지 17검체 (0.5%) 의 HPLC 패턴은표준균주들과일치하는패턴이없어 unclassified NTM으로분류하였다. M. tuberculosis를제외한 384검체는 19종의 NTM과 unclassified NTM으로동정되었고, single-cluster 그룹에는 M. asi- A B C D E F G H I Fig. 1. Characteristic HPLC chromatograms of standard Mycobacterium species with single-cluster peak patterns. (A) M. asiaticum. (B) M. bovis. (C) M. gastri. (D) M. gordonae. (E) M. kansasii. (F) M. marinum. (G) M. szulgai. (H) M. trivial and (I) M. tuberculosis.

HPLC 법을이용한 Mycobacteria 의동정 27 A B C D E F G H I J K L Fig. 2. Characteristic HPLC chromatograms of standard Mycobacterium species with double-cluster peak patterns. (A) M. abscessus. (B) M. acapulsensis. (C) M. agri. (D) M. avium. (E) M. celatum. (F) M. chelonae. (G) M. diernhoferi. (H) M. flavescens. (I) M. fortuitum. (J) M. gilvum. (K) M. intracellulare. (L) M. mucogenicum. (Fig. 2 continued next) aticum, M. gordonae, M. kansasii, M. marinum, M. szulgai 및 M. triviale 등 6 종 (Fig. 1), double-cluster 그룹에는 M. abscessus, M. acapulsensis, M. avium, M. chelonae, M. fortuitum, M. intracellulare, M. mucogenicum, M. nonchromogenicum, M. peregrinum, M. scrofulaceum, M. terrae 및 M. xenopi 등 12 종 (Fig. 2), triple-cluster 그룹에는 M. simiae 1 종이각각포함되었고 (Fig. 3), multi-cluster 그룹은검출되지않았다. 또한초진이거나최근 6 개월간동일검체의항산균배양검사에서음성으로판정되었던환자에서초기 3회의항산균배양검사로제한한본연구에서는모든환자에서동일한균주가검출되었다.

28 정윤성 김성률 장철훈외 1 인 M N O P Q R S T Fig. 2. (Continued from the previous page) (M) M. nonchromogenicum. (N) M. peregrinum. (O) M. phlei. (P) M. porcinum. (Q) M. scrofulaceum. (R) M. smegmatis. (S) M. terrae and (T) M. xenopi. 2. 임상검체에서 NTM 의균종분포 1,342 명의 3,107 검체중 M. tuberculosis 는 1,141 명 (85.0%) 2,723 검체 (87.6%) 였고, NTM 은 201 명 (15.0%) 384 검체 (12.4 %) 였다 (Table 2). NTM 으로동정된 384 검체는 M. kansasii 61 건 (15.9%), M. intracellulare 49건 (12.8%), M. gordonae 44건 (11.5%), M. avium 38건 (9.9%), M. fortuitum 34건 (8.9%), M. abscessus 25건 (6.5%), M. peregrinum 22건 (5.7%), M. szlugai 19건 (5.0%), M. marinum 14건 (3.7%), M. mucogenicum 14 건 (3.7%), M. xenopi 10건 (2.6%), M. terrae 8건 (2.1%), M. scrofulaceum 7건 (1.8%), M. chelonae 6건 (1.6%), M. triviale 5건 (1.3 %), M. simiae 4건 (1.0%), M. acapulsensis 3건 (0.8%), M. asiaticum 3건 (0.8%), M. nonchromogenicum 1건 (0.3%) 및 unclassified NTM 17건 (4.4%) 의분포를보였다 (Table 3). 검체별로는객담 244 (63.5%), 기관지흡인액 29 (7.6%), 소변 Table 2. Isolation rates of M. tuberculosis and nontuberculous mycobacteria in AFB culture positive specimens using HPLC method M. tuberculosis Nontuberculous mycobacteria Patients Specimens Patients Specimens N (%) N (%) N (%) N (%) 1,141 (85.0) 2,723 (87.6) 201 (15.0) 384 (12.4) 25 (6.5%), 흉수액 23 (6.0%), 피부조직 22 (5.7%), 림프절 19 (5.0%), 농 9 (2.3%), 뇌척수액 6 (1.6%), 위장관흡인액 3 (0.8%), 골수 3 (0.8%), 관절액 1 (0.3%) 검체등의빈도순으로검출되었고, 객담, 기관지흡인액, 흉수액을포함하는호흡기계검체가 296검체 (77.1%) 였고, 소변, 피부조직, 림프절, 농, 뇌척수액, 위장관흡인액, 골수, 관절액등의비호흡기계검체가 88검체 (22.9%) 였다. 5% 이상검출된 M. kansasii, M. intracellulare, M. gordonae,

HPLC 법을이용한 Mycobacteria 의동정 29 A B C D Fig. 3. Characteristic HPLC chromatograms of standard Mycobacterium species with triple-cluster peak patterns. (A) M. austroafricanum. (B) M. pulveris. (C) M. simiae and (D) M. vaccae. Table 3. Distribution of nontuberculous Mycobacterium species in clinical specimens Specimen Mycobacterium species Sputum BA Urine Pleural Skin Lymph Total Pus CSF GA BM JF fluid tissue node N (%) M. kansasii (%) 39 (10.16) 9 (2.34) 0 (0) 5 (1.30) 0 (0) 6 (1.56) 1 (0.26) 1 (0.26) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 61 (15.89) M. intracellurare (%) 33 (8.59) 6 (1.56) 0 (0) 2 (0.52) 2 (0.52) 3 (0.78) 0 (0) 1 (0.26) 0 (0) 2 (0.21) 0 (0) 49 (12.76) M. gordonae (%) 21 (5.47) 3 (0.78) 15 (3.91) 2 (0.52) 0 (0) 1 (0.26) 0 (0) 0 (0) 1 (0.26) 0 (0) 1 (0.26) 44 (11.46) M. avium (%) 25 (6.51) 2 (0.52) 0 (0) 2 (0.52) 2 (0.52) 3 (0.78) 3 (0.78) 0 (0) 0 (0) 1 (0) 0 (0) 38 (9.90) M. fortuitum (%) 24 (6.25) 1 (0.26) 2 (0.52) 3 (0.78) 1 (0.26) 1 (0.26) 1 (0.26) 0 (0) 1 (0.26) 0 (0) 0 (0) 34 (8.85) M. abscessus (%) 19 (4.95) 2 (0.52) 0 (0) 2 (0.52) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 2 (0.52) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 25 (6.51) M. peregrinum (%) 16 (4.17) 1 (0.26) 2 (0.52) 1 (0.26) 0 (0) 2 (0.52) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 22 (5.73) M. szlugai (%) 14 (3.65) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 1 (0.26) 2 (0.52) 2 (0.52) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 19 (4.95) M. marinum (%) 4 (1.04) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 8 (2.08) 0 (0) 2 (0.52) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 14 (3.65) M. mucogenicum (%) 9 (2.34) 1 (0.26) 2 (0.52) 1 (0.26) 0 (0) 1 (0.26) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 14 (3.65) M. xenopi (%) 2 (0.56) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 8 (2.08) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 10 (2.60) M. terrae (%) 6 (1.56) 1 (0.26) 0 (0) 1 (0.26) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 8 (2.08) M. scrofulaceum (%) 5 (1.30) 1 (0.26) 0 (0) 1 (0.26) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 7 (1.82) M. chelonae (%) 4 (1.04) 1 (0.26) 0 (0) 1 (0.26) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 6 (1.56) M. triviale (%) 4 (1.04) 0 (0) 0 (0) 1 (0.26) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 5 (1.30) M. simiae (%) 3 (0.78) 0 (0) 1 (0.26) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 4 (1.04) M. acpulsensis (%) 2 (0.52) 0 (0) 1 (0.26) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 3 (0.78) M. asiaticum (%) 2 (0.52) 0 (0) 1 (0.26) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 3 (0.78) M. nonchromogenicum (%) 1 (0.26) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 0 (0) 1 (0.26) unclassified NTM (%) 11 (2.86) 1 (0.26) 1 (0.26) 1 (0.26) 1 (0.26) 1 (0.26) 0 (0) 0 (0) 1 (0.26) 0 (0) 0 (0) 17 (4.43) Total 244 (63.54) 29 (7.55) 25 (6.51) 23 (5.99) 22 (5.73) 19 (4.95) 9 (2.34) 6 (1.56) 3 (0.78) 3 (0.78) 1 (0.26) 384 (100) Abbreviations: BA, Bronchial aspirates; CSF, Cerebrospinal fluid; GA, Gastric aspirates; BM, Bone marrow; JF, Joint fluid. M. avium, M. fortuitum, M. abscessus, M. peregrinum 및 M. szlugai 를 1 년단위로분석했을때각균종별검출률은차이가없었다 (Table 4). 고찰임상검체에서결핵균의동정은결핵균감염증을진단하기위한최선의방법이며, 최근후천성면역결핍증의증가와면역억제요법의일반화에따라의미있게증가하고있는 NTM의동정도매우중

30 정윤성 김성률 장철훈외 1 인 Table 4. Annual incidence of species comprising more than 5% of total nontuberculous mycobacteria Years Mycobacterium species 2002 2003 2004 2005 2006 Total N N N N N N M. kansasii 12 12 14 11 12 61 M. intracellurare 9 10 9 9 12 49 M. gordonae 10 9 7 10 8 44 M. avium 7 8 8 9 7 38 M. fortuitum 6 6 8 7 7 34 M. abscessus 5 4 5 5 6 25 M. peregrinum 3 5 4 4 6 22 M. szlugai 5 4 2 4 4 19 Total 57 58 57 59 62 293 요하다 [10-12]. NTM은현재까지 91종이상이알려져있으며 [27], 물, 토양, 공기및환자등에서검출된 NTM 중현재까지알려진균종에포함되지않는경우가 30% 에이른다고알려져있다 [28]. 임상검체에서 NTM이검출될경우기회감염균으로알려져있으나, 최근후천성면역결핍증의증가와면역억제요법의일반화에따라 NTM 감염증도의미있게증가하고있으며 [10, 11, 29, 30], 면역억제환자뿐만아니라정상면역능을가진사람들에서도 NTM 의검출빈도가증가하고있다 [5-8, 31-33]. 동시에 NTM 감염증은결핵과는달리개발도상국과선진국모두에서증가추세이다 [30]. 그러나현재까지 mycobacteria의균종분포를확인하기위한검출방법으로널리이용되고있는전통적인생화학법은민감도가낮거나검출에오랜시간이걸리고, 균종단계까지동정하기어렵다. 또한 mycobacteria의균종감별에빠르고정확하다고알려진중합효소연쇄반응법, 유전자소식자법등을많이사용하고있으나, 이방법들은오염에의한위양성률이높거나, 다양한 NTM을모두검출할수없거나, 각균종별로검사를시행해야하는단점들이있다 [15-21, 34]. 반면, HPLC를이용한 mycobacteria 동정법은균종특이적 mycolic acid를분석하여얻은 HPLC 패턴을표준균주들의 HPLC 패턴과대조하여동정하는방법으로상기의단점들이극복된정확한방법으로알려져있다 [22-26]. 본연구에서는 mycobacteria의균종분포를확인하기위해 33 종의 mycobacteria 표준균주를이용한 HPLC법으로동정하였는데, 3,107검체중 17검체를제외한 3,090검체의 HPLC 패턴이표준균주 33종중어느한패턴과일치하여 99.5%, M. tuberculosis를제외한 NTM의경우만으로제한하면 384검체중 367 검체 (95.6%) 에서동정이가능하여우수한변별력을확인할수있으며, 본연구에서는 unclassified NTM을포함하여총 20종으로 동정되었고, multi-cluster 그룹은검출되지않았다. 1960 년대 NTM 의국내빈도 [35, 36] 는배양양성검체중 1% 미만으로, 1970년김등 [37] 은객담에서 NTM이 2.7% 로보고하였는데, 본연구에서는 NTM이 384건 (201명) 으로배양양성검체의 12.4%, 환자의 15.0% 로나타나 70년대이후국내에서도 NTM의검출률이대단히증가한것을확인할수있었다. 또한임상검체에서분리되는 NTM의종별빈도와균종분포에관한보고도많지않은데, 1995년대한결핵및호흡기학회에서조사한 NTM 전국실태조사 [4] 에서는 1981년부터 1994년까지 14년간대한결핵협회결핵연구원에의뢰된검체중총 158 검체에서 159건의 NTM을전통적인생화학적방법으로동정하였다. 이조사에서 NTM의균주분포는 M. avium-intracellulare 104건 (65.2%), M. fortuitum 20건 (12.7%), M. chelonae 15건 (9.5%), M. gordonae 7건 (4.4%), M. terrae 5건 (3.2%), M. scrofulaceum 3건 (1.9%), M. kansasii 2건 (1.3%), M. szulgai 2건 (1.3%), M. avium-intracellulare & terrae 1건 (0.6%) 였다. 이에반해본연구에서는 2002년부터 2006년까지 5년간울산지역에서검출된 NTM이 384건으로 1981년부터 14년간전국적으로검출한 159건보다 2.5배정도로많았으며, 균종별빈도는 1995년대한결핵및호흡기학회에서조사한 NTM 전국실태조사 [4] 의검출된균종은총 9종임에반해본연구의임상검체에서검출된 NTM의종류는총 20종으로증가하였는데, 이는동정에 HPLC 법을이용하여보다다양한 NTM이동정되었고, NTM 감염증이증가추세에있는두가지이유때문으로판단된다. 그러나본연구에서 5% 이상검출된 M. kansasii, M. intracellulare, M. gordonae, M. avium, M. fortuitum, M. abscessus, M. peregrinum 및 M. szlugai를 1년단위로분석했을때각균종별검출률은차이가없었기때문에검출된균종의증가는 NTM 감염증의증가보다는 HPLC법을이용한동정으로보다다양한 NTM이검출된때문으로판단된다. 또한본연구의균종분포에서는 M. avium과 M. intracellulare 를포함하는 M. avium complex의경우검출빈도는 22.7% 로가장높지만 1995년대한결핵및호흡기학회에서조사한 NTM 전국실태조사 [4] 에서의 65.2% 에비해상대적으로감소하였고, M. fortuitum과 M. chelonae 등의경우에도본연구에서의빈도는각각 8.9%, 1.6% 로 1995년대한결핵및호흡기학회에서조사한 NTM 전국실태조사 [4] 의 12.7%, 9.5% 에비해상대적으로감소하였다. 반면 1995년 NTM 전국실태조사 [4] 와비교해 M. kansasii는 1.3% 에서 15.9% 로, M. gordonae는 4.4% 에서 11.5 % 로, M. abscessus는 0% 에서 6.5% 로, M. peregrinum은 0% 에서 5.7% 로, M. szlugai는 1.3% 에서 5.0% 로, M. marinum과 M.

HPLC 법을이용한 Mycobacteria 의동정 31 mucogenicum은 0% 에서 3.7% 로, M. xenopi는 0% 에서 2.6% 로증가하였는데, 이증감추세는미국의질병관리센터에서 1993년부터 1996년까지조사한 NTM 증감추세 [38] 와유사하며, 이는보다발전된정확한검출법으로다양한 NTM이동정되고, 전세계적으로 NTM 감염증이증가추세에있기때문인것으로판단된다. 또한 2006년고등 [39] 은 NTM 폐질환자의원인균은 M. avium complex (48%) 와 M. abscesssus (33%) 가가장많다고한결과와비교하면, 본연구에서는 M. kansasii 증가가특징적인데, 이는본연구에서호흡기및비호흡기의모든검체를대상으로검사하였고, NTM의지역적인분포특성등이원인으로판단된다 [40]. 보였고각각 9, 20, 4종이포함되었다. HPLC법으로 mycobacteria 동정성공률은 99.5%, M. tuberculosis를제외한 NTM의경우 95.6% 였다. 항산균배양양성검체중 NTM의비율은 12.4 % 였고, 총 20종의 NTM은 0.3-15.9% 까지의분포를보였다. 결론 : HPLC법은결핵균및 NTM 동정에우수한변별력을보였고, 우리나라에서도 NTM의검출률이대단히증가한것을확인하였다. NTM의경우M. avium-intracellulare, M. fortuitum, M. chelonae 등은상대적감소를, M. kansasii, M. gordonae 등은상대적증가추세를보였다. 참고문헌 본연구에서의 NTM 의검체별빈도는객담, 기관지흡인액, 흉 수액을포함하는호흡기계검체에서 296검체 (77.1%) 가검출되어 NTM도결핵과같이호흡기계에서가장많이검출되었고, 비호흡기계에서는소변, 피부조직, 림프절, 농, 뇌척수액, 위장관흡인액, 골수, 관절액등의다양한검체에서검출되었다. 결론적으로 HPLC법에의하여임상검체에서배양된항산균의 99.5% 및 NTM 균주의 95.6% 를동정할수있었으며, 20종의 NTM이배양항상균의 12.4% 를차지하였다. NTM의종별빈도에서는 M. avium-intracellulare, M. fortuitum, M. chelonae 등은상대적감소를, M. kansasii, M. gordonae 등은상대적증가추세를보였다. 그러므로 NTM 감염증의적절한진단과치료를위해서는임상검체에서 NTM을검출하기위해변별력이뛰어난검출법을이용하여야할것으로생각되며, NTM이검출될경우본연구의균종분포를진단과치료에기초자료로활용할수있을것으로판단된다. 1. Raviglione MC, Snider DE Jr, Kochi A. Global epidemiology of tuberculosis. Morbidity and mortality of a worldwide epidemic. JAMA 1995;273:220-6. 2. World Health Organization. Strategic framework to decrease the burden of TB/HIV. WHO/CDS/TB/2002.296, WHO/HIV_AIDS/ 02.2. 2002. 3. World Health Organization. Global Tuberculosis Control. WHO Report. Geneva, Switzerland. WHO/CDS/TB/2002.295. 2002. 4. Korean academy of tuberculosis and respiratory disease. National survey of mycobacterial disease other than tuberculosis in Korea. Tuberc Respir Dis 1995;42:277-94. ( 대한결핵및호흡기학회. 비결핵항산균증전국실태조사. 결핵및호흡기질환 1995;42:277-94.) 5. Falkinham JO 3rd. Epidemiology of infection by nontuberculous mycobacteria. Clin Microbiol Rev 1996;9:177-215. 요 약 6. Horsburgh CR Jr. Mycobacterium avium complex infection in the acquired immunodeficiency syndrome. N Engl J Med 1991;324:1332-8. 배경 : 결핵균및비결핵항산균 (non-tuberculous mycobacteria, NTM) 은의미있게증가하고있으며, NTM의경우병원성여부를판단하기힘들고, 효과적인치료가어렵기때문에 mycobacteria의균종감별은대단히중요하다. 본연구에서는 HPLC법을이용하여결핵균및다양한 NTM을동정하여임상검체에서의 mycobacteria의균종별분포를파악하여, 우리나라에서의결핵균및다양한 NTM의분포에대한기초자료로활용하고자하였다. 방법 : 항산균배양검사에서양성으로확인된 3,107검체를대상으로 mycobacteria의균종특이적 mycolic acid를 HPLC법으로분석하여얻은패턴을표준균주들의패턴과비교후동정하여균종분포를조사하였다. 결과 : HPLC 패턴은 single, double 및 triple-cluster 양상을 7. Hoffner SE. Pulmonary infections caused by less frequently encountered slow-growing environmental mycobacteria. Eur J Clin Microbiol Infect Dis 1994;13:937-41. 8. Prince DS, Peterson DD, Steiner RM, Gottlieb JE, Scott R, Israel HL, et al. Infection with Mycobacterium avium complex in patients without predisposing conditions. N Engl J Med 1989;321:863-8. 9. Wolinsky E. Nontuberculous mycobacteria and associated diseases. Am Rev Respir Dis 1979;119:107-59. 10. Mori T. Atypical mycobacteriosis. Nippon Rinsho 2001;59(S):S197-204. 11. Holdiness MR. Atypical mycobacterial infections. J La State Med Soc 1990;142:31-8. 12. Kruger M. Atypical mycobacterium infections. Derm Beruf Umwelt

32 정윤성 김성률 장철훈외 1 인 1990;38:109-17. 13. Diagnosis and treatment of disease caused by nontuberculous mycobacteria. This official statement of the American Thoracic Society was approved by the Board of Directors, March 1997. Medical Section of the American Lung Association. Am J Respir Crit Care Med 1997;156: S1-25. 14. Phillips MS and von Reyn CF. Nosocomial infections due to nontuberculous mycobacteria. Clin Infect Dis 2001;33:1363-74. 15. Park CM, Heo SR, Park KU, Song JH, Lee JH, Lee CT, et al. Isolation of Nontuberculous mycobacteria using polymerase chain reactionrestriction fragment length polymorphism. Korean J Lab Med 2006; 26:161-7. ( 박철민, 허세란, 박경운, 송정한, 이재호, 이춘택등. 중합효소연쇄반응- 제한절편길이다형성을이용한비결핵항산균의분리. 대한진단검사의학회지 2006;26:161-7.) 16. Nah J, Huh JW, Lee SH, Kim BC, Koh YS, Pai CH. Identification of mycobacterium tuberculosis complex using a gene probe method. Korean J Clin Pathol 1997;17:71-8. ( 나준, 허정원, 이성희, 김봉철, 고윤석, 배직현. Gene Probe 법에의한 Mycobacterium tuberculosis com- plex의동정. 대한임상병리학회지 1997;17:71-8.) 17. National Committee for Clinical Laboratory Standards. Molecular diagnostic methods for infectious diseases. Proposed guideline, 2nd ed. MM3-P2. Wayne, Pa: NCCLS, 2005. 18. Noordhoek GT, van Embden JD, Kolk AH. Questionable reliability of the polymerase chain reaction in the detection of Mycobacterium tuberculosis. N Engl J Med 1993;329:2036. 19. Leao SC, Sampaio JL, Martin A, Palomino JC, Portaels F. Profiling Mycobacterium ulcerans with hsp65. Emerg Infect Dis 2005;11:1795-6 20. Reisner BS, Gatson AM, Woods GL. Use of Gen-Probe AccuProbes to identify Mycobacterium avium complex, Mycobacterium tuberculosis complex, Mycobacterium kansasii, and Mycobacterium gordonae directly from BACTEC TB broth cultures. J Clin Microbiol 1994;32:2995-8. 21. Burman WJ and Reves RR. Review of false positive cultures for Mycobacterium tuberculosis and recommendations for avoiding unnecessary treatment. Clin Infect Dis 2000;31:1390-5. 22. Butler WR and Guthertz LS. Mycolic acid analysis by high-performance liquid chromatography for identification of Mycobacterium species. Clin Microbiol Rev 2001;14:704-26. 23. Butler WR, Jost KC Jr, Kilburn JO. Identification of mycobacteria by high-performance liquid chromatography. J Clin Microbiol 1991;29: 2468-72. 24. Butler WR,Floyd MM, et al. eds. Mycolic acid pattern standards for HPLC identification of mycobacteria. Atlanta, Ga: Centers for Disease Control and Prevention, US department of health and human services 1999:1-86.25. Butler WR, Floyd MM, et al. eds. Standardized method for HPLC identification of mycobacteria. Atlanta, Ga: US department of health and human services 1996:1-99. 26. Jeong J, Lee SH, Jeong US, Chang CH, Kim SR. Identification of mycobacteria using high performance liquid chromatography in clinical specimens. Korean J Clin Microbiol 2004;7:148-55. ( 정윤성, 이선호, 정의석, 장철훈, 김성률. 임상검체에서 High performance liquid chromatography법을이용한 mycobacteria의동정. 대한임상미생물학회지 2004;7:148-55.) 27. Euzeby JP ed. List of bacterial names with standing in nomenclature, 1998. Society for Systematic and Veterinary Bacteriology, London. 2002. 28. Tortoli E, Bartoloni A, Bottger EC, Emler S, Garzelli C, Magliano E, et al. Burden of unidentifiable mycobacteria in a reference laboratory. J Clin Microbiol 2001;39:4058-65. 29. Field SK and Cowie RL. Lung disease due to the more common nontuberculous mycobacteria. Chest 2006;129:1653-72. 30. Olivier KN. Nontuberculous mycobacterial pulmonary disease. Curr Opin Pulm Med 1998;4:148-53. 31. Dobos KM, Quinn FD, Ashford DA, Horsburgh CR, King CH. Emergence of a unique group of necrotizing mycobacterial diseases. Emerg Infect Dis 1999;5:367-78. 32. Inderlied CB, Kemper CA, Bermudez LE. The Mycobacterium avium complex. Clin Microbiol Rev 1993;6:266-310. 33. Primm TP, Lucero CA, Falkinham JO 3rd. Health impacts of environmental mycobacteria. Clin Microbiol Rev 2004;17:98-106. 34. O Brien RJ, Geiter LJ, Snider DE Jr. The epidemiology of nontuberculous mycobacterial diseases in the United States. Results from a national survey. Am Rev Respir Dis 1987;135:1007-14. 35. Kim KS, Shin YD, Ahn JW, Lee SK. Unclassified mycobacteria in Korea epidermiological study on unclassified infection using purified tuberculin protein. Tuberc Respir Dis 1966;13:5-20. ( 김경수, 신용달, 안재원, 이성관. Unclassified mycobacteria의역학적연구. 결핵및호흡기질환 1966;13:5-20.) 36. Lee SK and Shin YD. Epidemiologic study on the unclassified mycobacteria in Korea. Tuberc Respir Dis 1967;14:12-38. ( 이성관및신용달. 비정형항산균감염의역학적연구. 결핵및호흡기질환 1967;14: 12-38.) 37. Kim SC and Kim SC. A study on unclassified mycobacteria isolated

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