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123 국내의 경우, M. fructicola는 복숭아, 매실, 자두, 살구, 체 과실에 대한 발병률은 5% 정도였다. 잿빛무늬병은 꽃에도 리, 아몬드 등에 보고되었고, M. fructigena는 사과와 배, 그리 발생하였지만 주로 과실에 발생하여 피해를 주었다. 발생 고 M. laxa의 경우 체리에 보고되었다(The Korean Society of 초기 살구 과실의 표면에 작은 갈색 반점이 생기고 병이 진 Plant Pathology, 2009). 그러나 M. fructicola에 의한 잿빛무늬 병은 아몬드(Shim 등, 2007), 체리(Choi 등, 2014), 복숭아(Lim 전됨에 따라 갈색 반점이 점차 확대되어 수침상의 병반이 등, 2001)를 제외한 매실, 자두, 살구에서는 병원균에 대한 백색의 포자 덩어리가 밀생하여 결국 과실 전체가 부패하였 자세한 기록이 없어 좀더 깊이 있는 연구가 요구된다(Rural 다(Fig. 1C). 또한, 비가 많이 내리는 장마철에는 그대로 부패 Development Administration, 2008a; The Korean Society of 하여 살구 과실이 떨어졌으며 건조한 환경에서는 미라 과 Plant Pathology, 2009). 2015년 6월에 전라북도 전주시의 세 개 농가포장에서 재 실이 되어 나무 위에 남아 있었다(Fig. 1B). 특히, 수확기 1 2 배되고 있는 살구 과실에 잿빛무늬병 증상이 관찰되었다. 발 과류의 과실이 재배되는 모든 지역에서 발생하며, 꽃과 잎 병된 살구 과실에서 병원균을 순수 분리하여 균학적 특성 및 에서도 발생하지만 주로 성숙한 과실에 발생하여 수량 감소 DNA 염기서열을 분석한 결과 M. fructicola로 동정되었으며, 건전한 살구 과실에 인공 접종하여 병원성을 확인하였다. 따 의 직접적인 요인이 된다. 수확 후 저장이나 수송 중에도 병 퍼졌다(Fig. 1A). 시간이 더 지나면 갈변된 원형의 병반 위에 주를 앞두고 잿빛무늬병이 더욱 심하였다. 잿빛무늬병은 핵 이 진전되면서 큰 피해를 주는 것으로 이미 보고되었다(Rural 징, 균학적 특징, 병원성 검정 및 염기서열 분석결과를 포함 Development Administration, 2008b). 잿빛무늬병은 균핵 또 는 균사체의 형태로 병든 가지나 과실에서 월동하다가 이듬 하는 균학적 및 분자생물학적인 자료를 보고하고자 한다. 해 균핵이 발아한 자낭포자와 균사에서 형성된 분생포자가 라서 본 연구는 이전에 기록된 살구 잿빛무늬병에 대하여 병 병징. 잿빛무늬병은 살구 과실을 수확하는 시기인 6월 1차 전염원이 되며, 자낭포자 및 분생포자는 비바람 또는 곤 충에 의해 전염되며 상처 부위나 기공을 통해 침입하여 개 중순경에 Modern과 Alexander 품종에서 발생했으며, 전체 화기에 꽃 시들음 증상과 과실에 잿빛무늬병을 일으킨다. 특 A B D C E F Fig. 1. Brown rot caused by Monilinia fructicola on apricot. (A) Occurrence of brown rot in a farm in June 2015. (B) The fruit was infected, dark black mummified the whole fruits. (C) A brown rotted fruit covered with the grayish spore mass, sporodochia. (D, E) Monilioid chains and lemon shaped conidia. (F) Five-day-old colony of M. fructicola on a potato dextrose agar.

124 히, 개화기와등숙기의잦은강우는심각한피해를초래하므로적절한방제대책이없을경우 50% 75% 까지피해를주는것으로보고되었다 (Rural Development Administration, 2008b). 병원균의분리및병원성검정. 병원균의단포자를분리하기위하여발병포장에서이병과를채집하여실험실에서분생포자덩어리를떼어내어멸균수가들어있는 1.5 ml eppendorf 튜브에넣고볼텍스믹서로 30초동안흔들었다. 분생포자가들어있는멸균수를루프로찍어감자한천배지 (Difco, Sparks, MD, USA) 에치상하였다. 병원균을 3일간암배양하여단포자의끝부분을떼어감자한천배지에옮긴후 25 o C 항온기에서 5일간배양한뒤병원균의균학적특성을조사하였다. 병원균이감염된표본은고려대학교표본실 (Korea University Herbarium, KUS) 에보존하였다. KUS-F29117 로부터대표균주가분리되어농업유전자원정보센터 (Korean Agricultural Culture Collection, KACC) 에기탁하였으며 (accession No. KACC48000), 병원성검정및염기서열분석에사용하였다. 또한병원균의특성비교를위하여잿빛무늬병이감염된다른살구에서같은방법으로단포자를분리하여 JBARES37 균주를확보하였다. 병원성검정은 Alexander 품종에서실시하였다. 병원성접종원은 KACC48000 균주를감자한천배지에서 1주일간배양한후멸균수를넣고메스 (scalpel) 로포자를수거한포자현탁액을 3 10 5 conidia/ml로준비하였다. 병원성검정은건전한과실 5개위에포자현탁액을분무하였으며, 대조과는멸균수를분무하였다. 접종과와대조과를밀폐된플라스틱박스에넣고박스안쪽표면에멸균수를분무하여상대습도를 100% 유지하였으며, 25 o C± 1 o C의인큐베이터에보관하였다. 접종 3일후포장에서와같은전형적인잿빛곰팡이병증상이나타나기시작하였으며, 열매가한쪽에서부터갈변되기시작하여 5일째에는전체로확산되었고, 흰색의분생포자덩어리가형성되어병원균이재분리되었다. 따라서살구잿빛곰팡이병을일으키는병원균은병원성이있는것으로판단되며, 대조구에서는병징이나타나지않았다. 병원균의균학적특징및염기서열분석. 병원균의형태적특징을관찰하기위해 KACC48000 균주를감자한천배지에치상하여 25ºC에서 1주일동안배양하였다. 형태적특징은 differential interference contrast (DIC) 광학현미경으로 200 1,000배에서관찰하였다. 감자한천배지에서균사생육은직경이 60 78 mm/4일이었으며, 균총은흰색 회색으로중앙부분에무수히많은분생포자가형성되었다 (Fig. 1F). 현 미경으로관찰된분생포자 (n=30) 는분지된염주상으로사슬모양을나타냈으며 (Fig. 1D), 단생, 투명하고, 난형 레몬형으로크기는 14.6 18.0 8.5 11 μm였다 (Fig. 1E). 이상과같이살구잿빛무늬병을일으키는병원균의형태적특징과병원성검정을기초로 M. fructicola (G. Winter) Honey로동정하였다 (Pellegrino 등, 2009). 형태적특징을기초로한병원균의동정을뒷받침하고자염기서열분석을실시하였다. M. fructicola 병원균 (KACC48000) 을감자한천배지에서 1주일동안배양한균사를 ribosomal DNA (rdna) 의 internal transcribed spacer (ITS) 영역의염기서열에사용하였다. Genomic DNA는 DNeasy Plant Mini kit (QIAGEN, Valencia, Canada) 를이용하여분리하였고, ITS1/ITS4 (White 등, 1990) primer를이용하여 PCR로증폭하였다. 증폭시킨 PCR 산물은 1.5% agarose gel에서전기영동하여 band를확인한후, PCR purification kit (CoreOne TM ; CoreBio, Seoul, Korea) 를이용하여정제하였다. 염기서열은 autosequencer (ABI 3030) 로분석하였으며, 최종획득한 ITS의염기서열들은 GenBank database (National Center for Biotechnology Information [NCBI] US National Institute of Health Bethesda; http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/blast.cgi) 에서확인하였다. 계통수분석은 GenBank 데이터베이스에올라와있는 ITS의염기서열들을이용하였다. 계통수는 MEGA 6.0 프로그램을이용하여 neighbor-joining 방법으로작성하였으며, sequence distance는 Tajima-Nei parameter model로계산하였다 (Saitou와 Nei, 1987; Tamura 등, 2013). Botrytis cinerea (GenBank accession No. KM016553) 를계통수분석 outgroup 으로사용하였다. 살구잿빛무늬병을일으키는 KACC48000 균주의 ITS sequence 크기는 558 bp로 NCBI의 GenBank에등록 (accession No. KU513386) 하였다. NCBI에서 BLAST search한결과 M. fructicola로등록된 GenBank accession Nos. KC544809, JN176564, FJ515894, KM279616 등과 100% 일치하였다. 또한계통수작성결과 KC544809의염기서열은 M. fructicola와같은계통군에속함을확인할수있었다 (Fig. 2). 최근에 ITS 염기서열을이용한 Monilinia종간구분을위하여, Hu 등 (2011) 이중국에서복숭아잿빛곰팡이병을일으키는 M. fructicola, M. yunnanensis, M. fructigena, M. laxa를분리하여 ITS 유전분석을한결과 100% 종간구분이되었으며, 4종간에상당한유전적변이가있음을확인하였다. 그러나과거에는 M. laxa와 M. fructigena에는존재하지않고, M. fructicola의 small subunit (SSU) rdna에만위치한 418 bp group-i intron을분석하여 M. laxa와 M. fructigena로부터 M. fructicola를구분하였다 (Fulton

125 Fig. 2. Phylogenetic analysis by means of the neighbor-joining method comparing the internal transcribed spacer ribosomal DNA (rdna) region of Monilinia fructicola with that of other Monilinia spp. retrieved from GenBank. The numbers above the branches represent the bootstrap value. The fungi identified in this study are boldfaced. 과 Brown, 1997). M. fructicola에의한잿빛무늬병은세계적으로핵과류에발생하는중요한병으로알려져있으며 (Fulton과 Brown, 1997), 미국캘리포니아지역에서는이균의살균제저항성까지보고하였다 (Ma 등, 2003). 그러나우리나라의경우발생생태및병징에관한기록만확인된다. 따라서살구에서잿빛무늬증상을일으키는병원균을분리하여균학적특성, 병원성검정, ITS rdna 염기서열비교분석등의결과를바탕으로 M. fructicola로동정되었으며, 국내에보고된자료를좀더보완하는자료로제출하고자한다. 으키는병원균의형태적특징, 병원성검정, rdna의 ITS 영역의염기서열분석을기초로 M. fructicola로동정하였으며, NCBI에서 BLAST search한결과 M. fructicola로등록된 GenBank accession Nos. KC544809, JN176564, FJ515894, KM279616 등과 100% 일치하는것으로확인되었다. Conflicts of Interest No potential conflict of interest relevant to this article was reported. 요약 Acknowledgement 2015년 6월에살구나무 (Modern과 Alexander 품종 ) 에잿빛무늬병이발생하였으며, 과실에대한발병률은 5% 정도였다. 잿빛무늬병은발생초기살구과실의표면에작은갈색반점이생기다가병이진전된후에는점차확대되어수침상의병반이퍼지고, 시간이더지나면갈변된원형의병반위에백색의포자덩어리가밀생하여결국에는과실전체가부패하였다. 특히, 수확기 1 2주를앞두고잿빛무늬병발생이더욱심하였다. M. fructicola 분생포자는분지된염주상으로사슬모양을나타냈으며, 단생, 투명하고, 난형 레몬형으로크기는 14.6 18.0 8.5 11 μm였다. 살구잿빛무늬병을일 This study was carried out with the support of Cooperative Research Program for Agricultural Science & Technology Development (Project No. PJ01082906) Rural Development Administration, Republic of Korea. References Choi, H. W., Hong, S. K., Lee, Y. K., Nam, Y. J., Lee, J. G. and Shim, H. S. 2014. Characterization of Monilinia fructicola associated with brown rot of cherry fruit in Korea. Kor. J. Mycol. 42: 353-356. (In Korean)

126 Fulton, C. E. and Brown, A. E. 1997. Use of SSU rdna group-i intron to distinguish Monilinia fructicola from M. laxa and M. fructigena. FEMS Microbiol. Lett. 157: 307-312. Hu, M. J., Cox, K. D., Schnabel, G. and Luo, C. X. 2011. Monilinia species causing brown rot of peach in China. PLoS One 6: e24990. Kim, I. W. 1975. A guide for cultivation of stone fruit. Rural development administration, Suwon, Korea. (In Korean) Lim, T. H., Yi, J. C., Chang, T. H. and Cha, B. J. 2001. Fitness of dicarboximide-resistant and sensitive Monilinia fructicola isolated from peach in Korea. Plant Pathol. J. 17: 205-209. Ma, Z., Yoshimura, M. A. and Michailides, T. J. 2003. Identification and characterization of benzimidazole resistance in Monilinia fructicola from stone fruit orchards in California. Appl. Environ. Microbiol. 69: 7145-7152. Pellegrino, C., Gullino, M. L., Garibaldi, A. and Spadaro, D. 2009. First report of brown rot of stone fruit caused by Monilinia fructicola in Italy. Plant Dis. 93: 668. Rungjindamai, N., Jeffries, P. and Xu, X. M. 2014. Epidemiology and management of brown rot on stone fruit caused by Monilinia laxa. Eur. J. Plant Pathol. 140: 1-17. Rural Development Administration. 2008a. New illustrated book on diseases, insect pests in fruit trees. Rural Development Administration, Suwon, Korea. 550 pp. (In Korean) Rural Development Administration. 2008b. Diagnosis and control of insect pests and plant diseases. Rural Development Administration, Suwon, Korea. 436 pp. (In Korean) Saitou, N. and Nei, M. 1987. The neighbor-joining method: a new method for reconstructing phylogenetic trees. Mol. Biol. Evol. 4: 406-425. Shim, M. Y., Jeon, Y. J. and Kim, S. H. 2007. Characterization of a brown rot fungus isolated from dwarf flowering almond in Korea. Mycobiology 35: 30-35. Tamura, K., Stecher, G., Peterson, D., Filipski, A. and Kumar, S. 2013. MEGA6: molecular evolutionary genetics analysis version 6.0. Mol. Biol. Evol. 30: 2725-2729. The Korean Society of Plant Pathology. 2009. List of Plant Disease in Korea. 5th ed. The Korean Society of Plant Pathology, Suwon, Korea. 853 pp. White, T. J., Bruns, T., Lee, S. and Taylor, J. 1990. Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics. In: PCR Protocols: A Guide to Methods and Applications, eds. by M. A. Innis, D. H. Gelfand, J. J. Shinski and T. J. White, pp. 315-322. Academic Press, San Diego, CA, USA.