대한생식의학회지 : 제 37 권제 3 호 2010 관동대학교의과대학제일병원분자종양학연구실 1, 관동대학교의과대학제일병원생식생물학및불임연구실 2, 관동대학교의과대학제일병원산부인과 3 이창세 1 박동욱 2 * 박찬우 3 김태진 3 Role of HOXA Gene in Human Endometrial Decidualization Chang Se Lee 1, Dong Wook Park 2 *, Chan Woo Park 3, Tae Jin Kim 3 1 Laboratory of Molecular Oncology, 2 Laboratory of Reproductive Biology and Infertility, 3 Department of Obstetrics and Gynecology, Cheil General Hospital, Kwandong University College of Medicine, Seoul, Korea Objective: This study was performed to clarify the role of HomeoboxA (HOXA) and its related signaling molecules in the decidualization of primary cultured endometrial cells. Methods: Human endometrial tissues were obtained by curettage of hysterectomy specimens from patients with conditions other than endometrial diseases. Tissues were minced and digested with Trypsin-EDTA for 20 min, 37. Cells were cultured with DMEM/F12 medium in 37, 5% CO 2 incubator for 24 hrs. Cells were treated with HOXA10 sirna and added transforming growth factor (TGF)-β1 (10 ng/ml) for 48 hrs to induces decidualization in vitro. Reverse transcription polymerase chain reaction analysis was accomplished to observe the expression of HOXA10, prolactin, cyclooxygenase (COX)-2, peroxisome proliferatoractivated receptor (PPAR)-γ, and wingless-type MMTV integration site family (Wnt). Results: HOXA10 expression was increased (1.8 fold vs. non-treated control) in TGF-β1 treated cells. Decidualization marker, prolactin, was significantly increased in TGF-β1 treated cells compared with HOXA10 sirna treated cells. Endometrial cell differentiation marker, COX-2 was down-regulated by HOXA10 sirna even if cells were treated with TGF-β1. Wnt4 was down-regulated by treated with HOXA10 sirna, this expression patters was not changed by TGF-β1. Expression of PPAR-γ was down regulated by TGF-β1 in regardless of HOXA10 sirna treatment. Conclusion: TGF-β1 which is induced by progesterone in endometrial epithelial cells may induces stromal cell decidualization via HOXA10 and Wnt signaling cascade. [Korean. J. Reprod. Med. 2010; 37(3): 207-216.] Key Words: HOXA, Wnt, Decidualization, Endometrium 인간자궁내막은생리주기에따라생리 (menstruation), 증식및착상기자궁내막으로의분화를 접수일 : 2010 년 6 월 7 일, 수정일 : 2010 년 7 월 26 일게재확정일 : 2010 년 8 월 3 일주관책임자 : 박동욱, 우 ) 100-380 서울특별시중구묵정동 1-19, 관동대학교의과대학제일병원생식생물학및불임연구실 Tel: (02) 2000-7590, Fax: (02) 2265-5621 e-mail: gypsyroad@empal.com * 이논문은 2008 년도정부 ( 교육과학기술부 ) 의재원으로한국연구재단의지원을받아수행된기초연구사업임 (No. 313-2008-2-E00320). 반복하는조직이다. 이중자궁내막기질세포의탈락막화 (decidualization) 는생리주기중후기분비기 (late secretory phase) 에 progesterone의영향에의하여일어나며세포의형태학적, 분자생물학적분화를수반하는것으로알려져있다. 1,2 탈락막으로분화된자궁내막세포는 prolactin (PRL), relaxin, cyclooxygenase (COX)-2 등을발현시키는것으로알려져있으며이중 PRL은일반적으로사용되는 - 207 -
대한생식의학회지 탈락막화표지인자다. 3 Transforming growth factor (TGF)-β는영장류의자궁내막조직에서 sex steroid hormone에의한생리주기에따라그발현양상이변화하며이는 TGF-β가 sex steroid hormone의자궁내막착상환경조절에중요한역할을함을시사한다. 4 In vitro에서자궁내막세포를탈락막화시키기위하여는 progesterone, camp 또는 TGF-β1 등을외부에서첨가하여탈락막화를유도할수있다. 이중 TGF-β1은 3차원자궁내막공배양을이용한연구에서 progesterone 첨가에의하여자궁내막상피세포에서분비되는것으로알려져있으며분비된 TGF-β1은자궁내막기질세포에서발현되는 TGF-β 수용체와이와연결된일련의세포내신호전달시스템에의하여기질세포의탈락막화를유도하는것으로보고된바있다. 5 이러한 TGF-β1에의한자궁내막의탈락막화는 peroxisome proliferator-activated receptor (PPAR)-γ 에의하여억제되는것으로알려져있다. 3 Homeobox (HOX) 유전자는진화론적으로종간에매우잘보전되어있으며배발생에있어서형태형성및분화를조절하는것으로알려져있다. 6,7 포유류에서는 39개의 HOX 유전자가 HOXA, B, C, D 와같은 4개의유전자집단 (cluster) 에속하는것으로보고되고있으며각 cluster는각기다른염색체에위치하여 9~11개의유전자들을포함하는것으로알려져있다. 7 Taylor 등 8 은 paramesonephric duct 의발생과정에서 HOXA9의경우에는수란관으로발달될부분에서주로발현하며 HOXA10의경우자궁으로발달될부분, HOXA11은자궁저부및자궁경부, HOXA13은질 (vagina) 로발달될부분에 HOX 유전자 cluster가일렬로발현되는것을보고한바있다. 이러한 HOXA 유전자는이후성체시기에임신및착상에중요한역할을하는것으로알려져있다. HOXA 유전자는 sex steroid hormone 에의하여그발현이조절되는것으로알려져있다. 9 백서 (mouse) 의자궁내막에서 HOXA10은착상기자궁내막의해부학적표지인자인 pinopod의발현을조절하는것으로보고되었으며, 10 이와더불어 pinopod 내부를채우고있는 leukemia inhibitory factor (LIF) 의발현을조절하는것으로알려져있다. 11 따라서 HOXA10은착상기자궁내막으로의분화에중요한역할을하는것으로결론지을수있다. 이와더불어 HOXA11의경우자궁내막기질세포주에서 PRL의발현을증가시키는것으로보고되었다. 12 따라서본연구에서는 TGF-β1을첨가하여배양된자궁내막기질세포를탈락막화시키는과정에있어서 HOXA10 유전자및이와연관된것으로알려져있는유전자들의역할을관찰하고자하였다. 연구대상및방법 1. 자궁내막조직의획득자궁내막조직은관동의대제일병원산부인과를내원한환자중자궁내막질환이외의양성질환 ( 자궁근종 ) 으로인해전자궁적출술을시행한환자들을대상으로하였다. 이들은모두생리일을기준으로중기및후기분열기인여성들이었으며적출된자궁후저부로부터자궁내막조직을획득하였다. 모든조직은본원기관윤리위원회의심의및환자의동의하에시행하였으며최소 3인의환자의자궁내막조직을사용하였다. 2. 면역세포화학염색배양된세포를 3.7% formaldehyde 용액으로상온에서 15분간고정시켰다. Phospate buffered solution (PBS) 로세척하여남아있는고정액을제거한후일차항체를 500:1로희석하여 4시간동안반응시킨후통상적면역세포화학적염색을수행하였다. 면역조직화학에사용한일차항체는다음과같다. 이들을 diaminobenzidine (DAB)-chromogen으로발색시킨후 PBS를 culture dish에부어세포가건조되는것을방지한상태에서 phase contrast inverted microscope (Diaphot 300, Nikon Co., Tokyo, Japan) 를이용하여염색정도를확인하였다. HOXA10 및 PRL 일차항체는모두 Santa Cruz (California, CA, - 208 -
제 37 권제 3 호, 2010 이창세 박동욱 박찬우 김태진 USA) 사로부터구입하여사용하였으며 2차항체처리및발색 kit는 DAKO (Glostrup, Denmark) 사의 LSAB kit을구입하여사용하였다. 3. 자궁내막조직세포배양적출된자궁검체로부터획득한자궁내막조직을 PBS가들어있는 conical tube (Falcon, California, USA) 에담아무균실험대로운반하였고, PBS로여러번세척하여혈액을제거하였다. 자궁내막조직을 PBS가들어있는 dish에서잘게자른후원심분리하여상층액을제거하고, trypsin-edta (Gibco, Grand Island, NY, USA) 10 ml을첨가하여 37 에서 30분동안반응을시켰다. 반응후 fetal bovine serum (FBS) 1 ml을첨가하여효소반응을정지시키고, 원심분리하여상층액을제거하였다. 다시 PBS 5 ml을첨가하여현탁시킨후원심분리하여상층액을제거하고 DMEM F/12 (10% FBS) 10 ml을첨가하여재현탁시킨후상층액 8 ml (stromal fraction) 을 100 mm 배양접시 (Corning, Corning, NY, USA) 에분주한후하룻밤동안배양하였다. 부유하는세포및적혈구를 PBS로씻어내고 2회계대배양하였다. 실험에사용한세포는 DMEM F/12 (10% FBS; 1 nm E2; 100 nm P4) 조건하에서배양하였으며, 실험목적에따라 10 ng/ml의 TGF-β1 (Sigma, St. Louis, MO, USA) 을첨가하고, 48시간동안배양하여탈락막화를유도하였다. 4. Small interfering RNA (sirna) 에의한 HOXA10 유전자의 silencing Lipofectamine 2000 (Invitrogen, Gaithersburg, MD, USA) transfection reagent를이용하여 sirna를 transfection하였다. 자궁내막세포에 20 nmol의 HOXA10 sirna oligonucleotides (Dharmacon, ON- TARGETplus SMARTpool M-006336-02-0020) 를 transfection하였고, sirna를 transfection한후 24시간뒤에 TGF-β1 (Sigma) 을첨가하여 48시간동안배양하였다. 5. Reverse transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) 및통계처리실험목적에따라배양된세포에서 TRIZOL reagent (Invitrogen) 를이용하여 total RNA를추출하였다. 추출된 total RNA 2 μg으로 M-MLV reverse transcriptase (Promega, Madison, WI, USA) 를이용하여 cdna를합성하였다. 합성된 cdna를주형으로하여각유전자에대한 PCR을수행하였다. 합성된 cdna를주형으로각유전자에대한 primer (Table 1) 를제작하여 PCR을수행하였다. PCR 결과증폭 Table 1. Gene specific primer sequence Gene name Forward primer (5' to 3') Reverse primer (5' to 3') HOXA10 GCCCCTTCCGAGAGCAGCAAAG AGGTGGACGCTGCGGCTAATCT IGFBP1 CTCTCCATGTCACCAACATCAA CCCATTCCAAGGGTAGACGC PRL AAAGCTGTAGAGATTGAGGAGCA CGATTTTATGTGAATCCCTGCGT COX-2 CCCTTGGGTGTCAAAGGTAA GCCCTCGCTTATGATCTGTC PPAR-γ CTCATGAAGAGCCTTCCAACTCC ACCCTTGCATCCTTCACAAGC Wnt3 GACCACATGCACCTCAAATG GATGCAGTGGCATTTTTCCT Wnt4 ACCTGGAAGTCATGGACTCG GCCTCATTGTTGTGGAGGTT HOX, homeobox; IGFBP, insulin-like growth factor-binding protein; PRL, prolactin; COX, cyclooxygenase; PPAR, peroxisome proliferator-activated receptor; Wnt, wingless-type MMTV integration site family. - 209 -
대한생식의학회지 A B Figure 1. (A) Immunocytochemical images of cultured human endometrial cells. Over 95% of cultured endometrial cells express HOXA10. Immunological resulting in a brownish stain and counterstained with Mayer's hematoxyline ( 200). HOXA10 sirna eliminates HOXA10 expression in endometrial cells. (B) RT-PCR analysis for HOXA10 expression in cultured human endometrial cells. TGF-β1 (10 ng/ml, for 48 hr) upregulated HOXA10 mrna expression, these effect was diminished by treatment of HOXA10 sirna. HOX, homeobox; sirna, small interfering RNA; RT-PCR, reverse transcription polymerase chain reaction; TGF, transforming growth factor. 된유전자는통상적인 agarose 전기영동을수행하였으며 GeneFlash imaging system (Syngene, Frederick, MD, USA) 을이용하여 band의강도를측정하였다. 데이터는대조군을 1로하여증감을값으로나타내었으며각기독립적인 3번의실험을수행하였다. ANOVA test를이용하여통계를수행하였다. p값이 0.05 미만일경우대조군과비교하여통계적으로유의한변화로인정하였다. 결과 HOXA10 sirna의효과를알아보기위하여배양된자궁내막 HOXA10 sirna를 72시간처리하여 HOXA10 단백질및 mrna의발현을면역세포화학적방법및 RT-PCR 을이용하여확인하였다. 확인결과 HOXA10 sirna를처리한세포에서 90% 이상의세포가 HOXA10 단백질을발현하지않았으며 (Figure 1A), mrna의발현에있어서도 HOXA10 sirna를처리한군에있어서 HOXA10 mrna의발현이 50% 이상감소하는것을확인할수있었 - 210 -
제37권 제3호, 2010 이창세 박동욱 박찬우 김태진 A B Figure 2. Effect of HOXA10 sirna on and IGFBP-1 expression. TGF-β1 (10 ng/ml, for 48 hr) upregulated PRL and IGFBP1 mrna (A) and PRL protein (B) expression, these effect were inhibited by treatment of HOXA10 sirna. Values are the mean intensity (± standard deviation) from three independent experiments. Immunological resulting in a brownish stain and counterstained with Mayer's hematoxyline ( 200). *indicates p<0.05 vs. control. HOX, homeobox; sirna, small interfering RNA; PRL, prolactin; IGFBP-1, insulin-like growth factor-binding protein-1; TGF, transforming growth factor. 다. 또한 48시간 동안 10 ng/ml의 농도로 TGF-β1 수 없었다. 이와 더불어 또 하나의 탈락막 표지인 을 처리한 군에 있어서도 HOXA10 mrna의 발현 자로 알려진 IGFBP1 역시 TGF-β1를 처리한 군에 이 50% 가량 감소하는 것을 알 수 있었다 (Figure 서 1.9±0.38배 (p<0.05) 증가하는 양상을 보였으며 1B). 따라서 본 연구에 사용한 HOXA10 sirna는 대조군 및 HOXA sirna를 처리한 군 및 HOXA 효과적으로 HOXA10의 mrna와 그 산물 단백질 sirna와 TGF-β1만을 처리한 군에서는 그 발현양 의 발현을 효과적으로 억제함을 알 수 있었다. 의 변화를 관찰할 수 없었다 (Figure 2A, 2B). 또한 HOXA10 sirna에 의한 PRL의 발현 억제를 관 cyclooxygenase (COX)-2의 발현 역시 TGF-β1에 의 찰하기 위하여 48시간 동안 10 ng/ml의 TGF-β1을 하여 1.82±0.2배 (p<0.05) 증가하는 양상을 보였으 처리함과 동시에 HOXA10 sirna를 처리하여 PRL 나 sirna를 이용하여 HOXA10 유전자의 발현을 단백질 및 mrna의 발현을 RT-PCR 및 면역세포 억제한 군에 있어서는 증가를 관찰할 수 없었다 화학적 염색법으로 관찰하였다. 실험 결과 TGF-β1 (Figure 3). 을 처리한 군에서 PRL의 발현양이 처리하지 않은 이와 더불어 TGF-β의 세포 내 신호전달과 관계 대조군에 비하여 2.6±0.42배 (p<0.05) 증가하였으 있는 것으로 알려진 wingless-type MMTV integration 나 HOXA10 sirna를 동시에 처리한 군에 있어서 site family (Wnt)13의 발현양을 비교하였다. 실험 결 는 TGF-β1의 처리와는 상관없이 그 증가를 관찰할 과 Wnt3의 경우 TGF-β1의 처리에 의하여 발현양 - 211 -
대한생식의학회지 Figure 3. Effect of HOXA10 sirna on COX-2 expression. TGF-β1 (10 ng/ml, for 48 hr) upregulates PRL mrna expression. These effect was inhibited by treatment of HOXA10 sirna. Values are the mean intensity (± standard deviation) from three independent experiments. *indicates p<0.05 vs. control. HOX, homeobox; sirna, small interfering RNA; COX, cyclooxygenase; TGF, transforming growth factor; PRL, prolactin. Figure 4. Effect of HOXA10 sirna on Wnt3 and Wnt4 expression. TGF-β1 (10 ng/ml, for 48 hr) upregulates Wnt3 mrna expression. This effect was inhibited by treatment of HOXA10 sirna. Expression of Wnt for was not upregulated by TGF-β1, but it diminished by HOXA10 sirna. Values are the mean intensity (± standard deviation) from three independent experiments. *indicates p<0.05 vs. control. HOX, homeobox; sirna, small interfering RNA; Wnt, wingless-type MMTV integration site family; TGF, transforming growth factor. 이 1.6±0.2배 (p<0.05) 가량증가하였으나 HOXA10 sirna의처리에의하여 mrna의발현양에유의한차이를관찰할수없었다. 그러나, Wnt4 발현의경우 TGF-β1의처리에영향을받지는않았으나 HOXA10의발현을억제했을경우그발현이 0.4배가량감소함을확인할수있었다 (Figure 4). PPAR-γ의경우 TGF-β1 처리에의하여 0.48± 0.2 (p<0.05) 로그발현이감소되었으며, TGF-β1과 HOXA10 sirna를동시에처리한군에서는 0.47± 0.15 (p<0.05) 정도로발현이감소하였다. 그러나 HOXA10 sirna만단독으로처리한군에있어서는감소되거나증가하는양상을관찰할수없었다 (Figure 5). - 212 -
제 37 권제 3 호, 2010 이창세 박동욱 박찬우 김태진 Figure 5. Effect of HOXA10 sirna on peroxisome PPAR-γ expression. TGF-β1 (10 ng/ml, for 48 hr) inhibited PPARγ mrna expression. These effects were not affected by treatment of HOXA10 sirna. Values are the mean intensity (± standard deviation) from three independent experiments. *indicates p<0.05 vs. control. HOX, homeobox; sirna, small interfering RNA; PPAR, peroxisome proliferator-activated receptor; TGF, transforming growth factor. 고찰백서의자궁내막에서 HOXA10의발현을억제시켰을경우배란이정상적으로이루어져도정상적인착상이일어나지않는다. 14 이는 HOXA 유전자산물이자궁내막의분화및착상환경 (endometrial receptivity) 구현에중요한역할을하는것을의미하는것으로볼수있다. 따라서본연구에서는인간자궁내막의분화중탈락막화과정에있어서 HOXA10의역할및이와관련된유전자들의발현을관찰하고자하였다. 본연구에서자궁내막기질세포의탈락막화를유발하는것으로알려진 TGF-β1을처리한경우 HOXA10의발현이유의하게증가함을볼수있었다 (Figure 1B). 현째까지 TGF-β에의한 HOX 유전자발현조절에관한보고는그리많지않다. 그러나 Gamer 등 15 은닭의사지 (limb) 발달에있어서 TGF-β의상위족 (superfamily) 인 GDF11이일부 HOX 유전자의발현을조절함을보고한바있다. 따라서본연구에서도자궁내막분화인자인 TGF-β 가배양된자궁내막세포의 HOXA10의발현을유도하는것으로생각된다. 배양된자궁내막세포에 서 PRL 및 COX-2의발현은 HOXA10을 knockdown 시켰을경우 TGF-β1의처리와상관없이발현양의증가를보이지않았다 (Figures 2, 3). 이러한연구결과는 hcg를처리한배양된자궁조직에서 HOXA- 10의발현이증가된다는최근의보고 16 와도일치하는것으로초기착상에있어서 HOXA10이중요한역할을할것을의미한다. 또한영장류를이용한자궁내막증모델연구 17 에서밝힌바와같이 HOXA- 10은자궁내막에서탈락막화를조절하는인자중하나라는것을증명하는결과로생각된다. Wnt 유전자는초파리의체절분화와연관되어있으며다양한 glycoprotein의발현과연관되어있는것으로알려져있다. 인간과백서에서 Wnt족유전자들은 19개그룹의신호전달분자들의분비와관련되어있으며이들은세포의세포간상호작용, 생장및분화에관계하는것으로알려져있다. 18 백서를이용한착상및임신모델에서 Wnt는난소로부터분비되는 steroid hormone에의하여그발현이조절되며임신및착상에관여하는것으로보고되었다. 19 따라서본연구에서도인간자궁내막의탈락막화과정에 Wnt가관여할것으로가정하였다. 연구결과 Wnt3의경우 TGF-β1의처리에의하여 - 213 -
대한생식의학회지 Figure 6. A schematic drawing of human endometrial stromal cell decidualization. TGF, transforming growth factor; HOX, homeobox; PPAR, peroxisome proliferatoractivated receptor; Wnt, winglesstype MMTV integration site family. Chang Se Lee. Role of HOXA Gene in Human Endometrial Decidualization. Korean J Reprod Med 2010. 그발현이증가하였으나 HOXA10의발현을억제한군에있어서는그발현의변화를관찰할수없었다. 그러나 Wnt4의경우에는 TGF-β1의첨가에의하여그발현양이증가하지는않았으나 HOXA10의발현을 knockdown시킨자궁내막세포에있어서는그발현양이감소하는것을관찰할수있었다 (Figure 4). 반면에 Wnt-6, -7, -5b, -10b 및 -3a의경우 HOXA10 sirna 및 TGF-β1의처리에의하여발현양의변화를관찰할수없었다 (data not shown). 현재까지다양한 Wnt 유전자들이인간자궁내막에서생리주기중증식및분비기에발현하는것으로알려져있다. 20 이중 Wnt4는포배의착상에중요한역할을하는것으로보고되었으며인간과백서의자궁내막에서탈락막화과정중그발현이증가하는것으로알려져있다. 배양된백서자궁내막을이용한연구에서 TGF-β의상위족인 BMP2가 Wnt4를하위타깃으로하여탈락막화를유발한다는연구결과 21 에서나타내는바와같이본연구에서도인간자궁내막세포의탈락막화과정에있어서도 TGF-β의하위타깃으로 Wnt4가작용함을알수있었다. 이러한연구결과로미루어 TGF-β에의한자궁내막세포의탈락막화과정은 TGF-β에의하여인산화된 smad2/3가핵으로이동하여 Wnt4의발현을조절하며이결과탈락막화가진행되는것으로가정할수있으며이에대한추가적인연구가필요하다고생 각된다. PPAR는 nuclear hormone receptor 족의일원으로서기질의존적전사요소 (ligand-dependent transcription factors) 로알려져있다. 현재까지세종류의 PPAR 이알려져있으며 (PPARα, β, γ) 이중 PPARγ 는세포의생장, 분화, 사멸및염증반응과같은다양한생체반응을조절하는것으로보고되고있다. 이와더불어 PPARγ 를인간간암세포에서과발현시켰을경우 TGF-β1에의한 Smad 활성을억제하는것으로알려져있다. 22 Chang 등 3 은 TGF-β1에의한자궁내막세포의탈락막화과정은 PPARγ 에의해서억제됨을보고한바있다. 본연구에서도 TGF-β1 을처리한세포에서 PPARγ mrna의발현이현저하게감소하는것을관찰할수있었다. 그러나 HOXA10의발현억제에따라그발현양의변화는관찰되지않았다 (Figure 5). 이러한결과로미루어 TGF-β1와 PPARγ간에는음의상관관계가있는것으로보이며이러한과정은 HOXA10의발현과는무관하게진행되는것으로생각된다. 본연구진은이전의연구결과에서자궁내막기질세포의탈락막화과정은 progesterone에의한직접적인영향보다는 progesterone에의하여자궁내막상피세포에서분비된 TGF-β가기질세포에발현된 TGF-β 수용체와결합함으로써일어남을증명하였으며이와같은일련의과정은 PPARγ에의하여 - 214 -
제 37 권제 3 호, 2010 이창세 박동욱 박찬우 김태진 억제됨을보고한바있다. 3,5 본연구에서는이러한일련의탈락막화과정에 TGF-β 이외에도 HOXA10 및 Wnt 역시관여함을관찰하였다. 결론적으로, 성호르몬에의하여착상기로분화되는자궁내막에서 progesterone에의하여자궁내막상피세포로부터분비된 TGF-β에의한자궁내막기질세포의탈락막화과정은 HOXA10과 Wnt를통한세포내신호전달과정을거치는것으로결론지을수있다 (Figure 6). 또한이러한세포내신호전달과정및각분자들간의정확한상관관계를증명하기위한추가적인분자생물학적인연구가필요할것으로생각된다. 참고문헌 1. Takekida H. Autoradiographic studies on the nucleic acid and protein synthesis and the decidualization of endometrium in early pregnancy of rat. Acta Obstet Gynaecol Jpn 1971; 18: 200-13. 2. Tamaya T, Fujimoto J, Arabori K, Wada K, Kato Y, Okada H. The biologic role of sex steroid receptors in the decidualization of human endometrium. Asia Oceania J Obstet Gynaecol 1985; 11: 573-8. 3. Chang HJ, Lee JH, Hwang KJ, Kim MR, Chang KH, Park DW, et al. Transforming growth factor (TGF)-beta1-induced human endometrial stromal cell decidualization through extracellular signal-regulated kinase and Smad activation in vitro: peroxisome proliferator-activated receptor gamma acts as a negative regulator of TGF-beta1. Fertil Steril 2008; 90: 1357-65. 4. Sachdeva G, Patil V, Katkam RR, Manjramkar DD, Kholkute SD, Puri CP. Expression profiles of endometrial leukemia inhibitory factor, transforming growth factor beta2 (TGFbeta2), and TGFbeta2 receptor in infertile bonnet monkeys. Biol Reprod 2001; 65: 1-8. 5. Kim MR, Park DW, Lee JH, Choi DS, Hwang KJ, Ryu HS, et al. Progesterone-dependent release of transforming growth factor-beta1 from epithelial cells enhances the endometrial decidualization by turning on the Smad signalling in stromal cells. Mol Hum Reprod 2005; 11: 801-8. 6. Pinsonneault J, Florence B, Vaessin H, McGinnis W. A model for extradenticle function as a switch that changes HOX proteins from repressors to activators. EMBO J 1997; 16: 2032-42. 7. Lemons D, McGinnis W. Genomic evolution of Hox gene clusters. Science 2006; 313: 1918-22. 8. Taylor HS, Vanden Heuvel GB, Igarashi P. A conserved Hox axis in the mouse and human female reproductive system: late establishment and persistent adult expression of the Hoxa cluster genes. Biol Reprod 1997; 57: 1338-45. 9. Taylor HS. The role of HOX genes in human implantation. Hum Reprod Update 2000; 6: 75-9. 10. Bagot CN, Kliman HJ, Taylor HS. Maternal Hoxa10 is required for pinopod formation in the development of mouse uterine receptivity to embryo implantation. Dev Dyn 2001; 222: 538-44. 11. Quinn CE, Detmar J, Casper RF. Pinopodes are present in Lif null and Hoxa10 null mice. Fertil Steril 2007; 88: 1021-8. 12. Lynch VJ, Brayer K, Gellersen B, Wagner GP. HoxA-11 and FOXO1A cooperate to regulate decidual prolactin expression: towards inferring the core transcriptional regulators of decidual genes. PLoS One 2009; 4: e6845. 13. Guo X, Wang XF. Signaling cross-talk between TGF-beta/ BMP and other pathways. Cell Res 2009; 19: 71-88. 14. Satokata I, Benson G, Maas R. Sexually dimorphic sterility phenotypes in Hoxa10-deficient mice. Nature 1995; 374: 460-3. 15. Gamer LW, Cox KA, Small C, Rosen V. Gdf11 is a negative regulator of chondrogenesis and myogenesis in the developing chick limb. Dev Biol 2001; 229: 407-20. 16. Fogle RH, Li A, Paulson RJ. Modulation of HOXA10 and other markers of endometrial receptivity by age and human chorionic gonadotropin in an endometrial explant model. Fertil Steril 2010; 93:1255-9. 17. Kim JJ, Taylor HS, Lu Z, Ladhani O, Hastings JM, Jackson KS, et al. Altered expression of HOXA10 in endometriosis: potential role in decidualization. Mol Hum Reprod 2007; 13: 323-32. 18. Polakis P. The many ways of Wnt in cancer. Curr Opin Genet Dev 2007; 17: 45-51. 19. Hayashi K, Erikson DW, Tilford SA, Bany BM, Maclean JA 2nd, Rucker EB 3rd, et al. Wnt genes in the mouse uterus: potential regulation of implantation. Biol Reprod 2009; 80: 989-1000. - 215 -
대한생식의학회지 20. Tulac S, Nayak NR, Kao LC, Van Waes M, Huang J, Lobo S, et al. Identification, characterization, and regulation of the canonical Wnt signaling pathway in human endometrium. J Clin Endocrinol Metab 2003; 88: 3860-6. 21. Li Q, Kannan A, Wang W, Demayo FJ, Taylor RN, Bagchi MK, et al. Bone morphogenetic protein 2 functions via a conserved signaling pathway involving Wnt4 to regulate uterine decidualization in the mouse and the human. J Biol Chem 2007; 282: 31725-32. 22. Han C, Demetris AJ, Liu Y, Shelhamer JH, Wu T. Transforming growth factor-beta (TGF-beta) activates cytosolic phospholipase A2alpha (cpla2alpha)-mediated prostaglandin E2 (PGE)2/ EP1 and peroxisome proliferator-activated receptor-gamma (PPAR-gamma)/Smad signaling pathways in human liver cancer cells. A novel mechanism for subversion of TGFbeta-induced mitoinhibition. J Biol Chem 2004; 279: 44344-54. = 국문초록 = 목적 : Small interfering RNA (sirna) 를이용하여 homeobox (HOXA) 10 유전자의발현이억제된일차배양자궁내막세포를이용하여자궁내막탈락막화 (decidualization) 에 HOXA유전자를포함한세포내신호전달기전을분석하고자하였다. 연구방법 : 본원산부인과에서자궁내막질환이외의이유로전자궁적출술을받은환자의자궁내막조직을채취한다. 37 에서 20분간 Trypsin-EDTA를처리하여단일세포로분리한후 10% fetal bovine serum이첨가된 DMEM/F12 배지를이용하여 24시간동안 37 5% CO 2 배양기안에서배양한다. 배양된자궁내막세포를 HOXA10 sirna로첨가한후 TGF-β1을 10 ng/ml 농도로 48시간첨가하여탈락막화를유도한다. 배양된자궁내막세포에서 reverse transcription polymerase chain reaction을이용하여 HOXA10, prolactin, cyclooxygenase (COX)-2, peroxisome proliferator-activated receptor (PPAR)-γ 및 wingless-type MMTV integration site family (Wnt) 의발현을관찰하였다. 결과 : HOXA10의경우 transforming growth factor (TGF)-β1과 HOXA10 sirna를처리하지않은대조군에비하여 TGF-β1을처리한군에서약 1.8배가량발현양의증가를보였다. 자궁내막탈락막표지인자로알려져있는 prolactin 의경우 TGF-β1을처리한경우대조군에비하여유의한발현의증가를보였으며 HOXA10 sirna를처리한군에있어서는 TGF-β1을첨가하더라도 prolactin mrna의발현양의증가를관찰할수없었다. 또한자궁내막세포의분화인자로알려져있는 COX-2의발현역시 HOXA10 sirna를처리한군에있어서 mrna 발현양이유의하게감소하였으며 TGF-β1을처리하여도발현의증가를관찰할수없었다. Wnt4의경우 HOXA10 sirna를이용하여 HOXA10의발현을억제한경우대조군에비하여유의하게 mrna의발현양이감소하였으며이러한발현양의감소는 TGF-β1을처리하여도증가됨을관찰할수없었다. PPARγ의발현은 HOXA10 sirna의처리와관계없이 TGF-β1에의하여감소하는것을관찰할수있었다. 결론 : Progesterone에의하여자궁내막상피세포에서분비되는것으로알려져있는 TGF-β1에의한자궁내막기질세포의분화 ( 탈락막화 ) 는 HOXA10 및 Wnt에의하여조절되는것으로생각된다. 중심단어 : HOXA, Wnt, 탈락막화, 자궁내막 - 216 -